Pcr heterod

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Colombia Médica Vol. 37 Nº 3, 2006 (Julio-Septiembre)
PCR-heterodúplexporagrupamiento:Implementacióndeunmétodo
de identificación de portadores de la mutación más común causal de
fibrosisquísticaenColombia
LINA MANUELA JAY, LIC. QUIM.1
, HEIDI MATEUS, M.D.2
, DORA FONSECA, BIOL.2
,
CARLOS MARTÍN RESTREPO, M.D.3
, GENOVEVA KEYEUX, BIOL., PH.D.4
RESUMEN
Introducción:Lafibrosisquística(FQ)esunaenfermedadautosómicarecesivafrecuente,conunaincidenciade1en2,500recién
nacidos.Lacausanmásde1,300mutacionesdistintasenelgenreguladordelaconductanciatransmembranaldelafibrosisquística
(CFTR). Sin embargo, la mutación F508del es la más común en la mayoría de las poblaciones.
Objetivos:Desarrollodeunatécnicarápida,debajocostoyconfiablequepermitafiltrarconrapidezalosportadoresoafectados
por esta mutación que mediante el asesoramiento genético, contribuya a disminuir la aparición de nuevos casos y a un diagnóstico
temprano de los enfermos y así lograr un descenso en la morbilidad y la mortalidad asociadas con la fibrosis quística en Colombia.
Metodología: En el presente estudio se aplicó la técnica PCR-heterodúplex por agrupamientos, gracias al análisis de 400
muestras de sangre en papel filtro obtenidas de individuos asintomáticos para la FQ.
Resultados: En las pruebas de validación de la técnica PCR-heterodúplex por agrupamiento se obtuvo una eficiencia,
reproducibilidad y especificidad de 100% y una sensibilidad de 92%.
Conclusiones: Se demostró la sensibilidad y reproducibilidad de la técnica PCR Directa-heterodúplex por agrupamientos de
hasta 10 muestras, que se pueden emplear en programas para filtrar heterocigotos y afectados de F508del.
Palabras clave: Fibrosis quística; CFTR; Análisis heterodúplex; Mutación; Filtrado genético; Colombia.
PCR-heteroduplex by grouping: rapid screening carrier method for cystic fibrosis F508del mutation in Colombia
SUMMARY
Background: Cystic fibrosis (CF) is the most frequent autosomal recessive disorder in the Caucasian population with an
incidence of 1 in 2,500 newborns. More than 1,300 mutations in the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR)
genethatcausesCFhavebeendescribed.However,mutationF508delisthemostcommonmutationindifferentpopulationsaround
the world.
Objective:Todevelopafast,reliableandlow-costtechniquetoscreencarriersandaffectedindividualsfortheF508delmutation.
This kind of analysis will have an impact on genetic counselling to decrease the incidence of new cases, in the early diagnosis and
instauration of appropriate treatment to decrease morbidity and mortality associated to CF in Colombia.
Methods: The reliability of the PCR-heteroduplex by grouping technique by analysis of 400 blood spot samples from
asymptomatic CF patients was defined.
Results: UsingPCR-heteroduplexbygroupingtechnique100%efficiency,reproducibilityandspecificityand92%sensitivity
were found.
Conclusions: The sensitivity and reproducibility of the PCR-heteroduplex by grouping technique up to pooling of 10 samples
were demonstrated. This kind of analysis could be used in heterozygotes and affected screening programs.
Key words: Cystic fibrosis; CFTR; Heteroduplex analysis; Genetic screening; Colombia.
© 2006 Corporación Editora Médica del Valle Colomb Med 2006; 37: 176-182
1. Licenciada en Química, Universidad Distrital Francisco José de Caldas, Facultad de Ciencias y Educación, Bogotá, Colombia.
2. Profesora Titular, Unidad de Genética, Facultad de Medicina, Universidad del Rosario, Bogotá, Colombia.
e-mail: hmateus@urosario.edu.co dfonseca@urosario.edu.co
3. Coordinador Unidad de Genética, Facultad de Medicina, Universidad del Rosario, Bogotá, Colombia.
e-mail:cmrestre@urosario.edu.co
4. Profesora Asociada, Unidad de Genética, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá. e-mail: gkeyeuxb@unal.edu.co
Recibido para publicación mayo 31 de 2005 Aceptado para publicación junio 15 de 2006

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La fibrosis quística (FQ) es la enfermedad genética
autosómica recesiva de mayor frecuencia en la población
caucásica,conunaincidenciade1en2,500reciénnacidos
vivos. Los afectados con FQ presentan enfermedad
pulmonar crónica, alteraciones digestivas como insufi-
ciencia pancreática y elevación de los electrólitos en el
sudor. La FQ se debe a mutaciones en el gen regulador de
la conductancia transmembranal de la fibrosis quística
(CFTR)1
, localizado en el cromosoma 7q31.2, del que se
conocen hasta la fecha más de 1,300 mutaciones o
polimorfismosenestegen2
;lamutaciónF508deleslamás
frecuente y se observa en 66% de los afectados a nivel
mundial3
. La frecuencia de portadores sanos (hetero-
cigotos) en la población caucásica se ha estimado en 1 de
cada 25 personas4
.
En América Latina pocos países han informado estudios
sobreeltema.CubaeselpaísconlamayorincidenciadeFQ
(1/3,862)5
y en México se presenta en 1/9000 nacimientos6
;
CostaRicaeseldemenorfrecuenciadelamutaciónF508del
con22.9%7
yArgentinaeldemayorfrecuencia(59.5%)8
.En
un estudio en hispanos de los Estados Unidos, que agrupa
personas de casi toda América Latina, esta mutación se
encontró en 48% de los afectados9
.
EnColombiahastaelmomentonoseconocelaincidencia
realdelaenfermedadnilafrecuenciadeportadores;algunos
estudios previos hallaron en la mutación F508del una cifra
cercana a 40%, con amplias variaciones regionales (25%-
60%)10,11
y una frecuencia de portadores de 1 en 65, que se
debetomaratítuloindicativo,pueslosestudiossehicieronen
un pequeño número de controles sanos11,12
.
La mutación F508del se encuentra en el exon 10 del
gen CFTR y se produce por la deleción de tres pares de
bases que llevan a la pérdida de un codon de fenilalanina
en la proteína. Como es alta su prevalencia, es importante
realizarestudiosdeportadoresquepermitanidentificarlas
personas en riesgo de tener un hijo afectado por la
enfermedad. Esta mutación convencionalmente se había
diagnosticado mediante la reacción en cadena de la
polimerasa (PCR) amplificando la región específica del
exon 10 donde esta se encuentra. Sin embargo, como la
mutación I507del, se encuentra muy cercana a la F508del
y corresponde también a la deleción de tres pares de
bases, este abordaje metodológico no permitiría diferen-
ciar estas dos mutaciones, lo que puede llevar a errores
diagnósticos. La PCR seguida del análisis de hetero-
dúplex permite distinguir estas mutaciones, gracias a la
formación, por complementariedad de las cadenas de
ADN, de bandas específicas para cada una ellas. La
ejecución de esta metodología ha permitido el estudio
individual de portadores en otras poblaciones. Para llevar
a cabo estudios poblacionales exhaustivos en personas
sanas que permitan conocer indicadores epidemiológicos
de una enfermedad que se presume común en el medio
colombiano, se hace necesario poner en funcionamiento
unatécnicarápida,debajocosto,eficienteyconfiableque
permita identificar los portadores o los afectados por la
mutación F508del. En el presente estudio se practicó la
técnica de PCR-heterodúplex, aplicada en el análisis
simultáneodevariasmuestrasdesangre,paradescubrirla
mutaciónF508delenespecímenestomadossobrepapelde
filtroS&S903,afindeserutilizadaenestudiospoblacionales
futurosydeterminarlafrecuenciadelamutaciónenelpaís
o en pruebas diagnósticas de portadores y afectados por
tal mutación.
MATERIALES Y MÉTODOS
Muestras empleadas. El estudio se presentó al Comi-
té de Ética de la Facultad de Medicina de la Universidad
delRosarioparasuaprobación.Seutilizóunacolecciónde
400muestrasdesangre,tomadasdelbancodellaboratorio
de biología celular y molecular, de personas sanas que
antes firmaron un consentimiento informado aceptando
participar anónimamente en estudios poblacionales; las
muestrassehabíanconservadoenpapelfiltroS&S903.Se
incluyeron como controles muestras de 68 pacientes
heterocigotos para la mutación F508del, provenientes del
Banco de ADN de fibrosis quística y además muestras de
50personasvoluntarias,homocigotasparaelalelonormal,
estos genotipos se verificaron previamente con el estuche
comercial de detección de mutaciones de Roche
Molecular Systems21
y la técnica PCR-heterodúplex
simple descrita por Raskin et al.13
; esta última prueba se
consideracomoel«métododereferencia»paraidentificar
la mutación F508del en el presente estudio.
Técnica PCR-heterodúplex por agrupamiento. En
cadapapeldefiltroseubicaronmásomenos15mldesangre
total(1gotadepositadadirectamentedelajeringa),volumen
quepermitíaunasaturacióncompletadelpapel,sesecarony
almacenaron a temperatura ambiente. De cada muestra se
extrajo un fragmento de 1 mm2
, que se identificaron y
agruparon en conjuntos de 5, 10 ó 20 muestras. En seguida
serealizóunaamplificacióndelADNmediantelatécnicade
reacción en cadena de la polimerasa (PCR de la sigla en

178
inglés), y se agregó a cada grupo de muestras una mezcla
maestra que contenía: amortiguador 10X (Tris Base 10 mM
pH8.0yKCl50mM),MgCl2
2.5mM,Chelex100Xal0.09%,
dNTPs0.07mM,0.6pmol/µldecadaunodelosprimers,para
un volumen final de 50 µl. Los primers utilizados fueron: -
forward- 5’ GTT TTC CTG GAT TAT GCC TGG 3’ y -
reverse-: 5’ ATG CTT TGA TGA CGC TTC TGT 3’1
. Al
comienzo de la reacción de PCR se hizo un choque térmico,
pues se sometieron las muestras a tres ciclos de
desnaturalización inicial (94°C por 6 minutos, luego
desnaturalizacióna96°Cpor3minutosyporúltimo3minutos
de renaturalización a 55°C), estos ciclos se utilizan para
producir liberación del ADN e inactivar proteínas y metales
pesados según la técnica descrita por Raskin et al.13
, y
Makowski et al.14
Después, se agregó una unidad de enzima
TaqDNA polimerasa y se utilizó un programa de amplifica-
cióncompuestopordesnaturalizaciónprolongadaa94°Cpor
5minutos,seguidapor40ciclosdedesnaturalizacióna94°C
por 45 segundos, alineamiento a 60°C por 45 segundos y
extensión a 72°C por 45 seg y se culminó con un período de
extensión prolongada de 72°C por 10 minutos.
ParaelanálisisdelosproductosamplificadosporPCRse
requiere la formación de un heterodúplex (híbrido de ADN
que contenga una copia normal y una mutante en una doble
hebrainvitro).Elheterodúplexseobtuvoaldesnaturalizarlas
cadenasamplificadasdeADNa94°Cpor10minutosyluego
una fase de renaturalización a 55°C por 25 minutos en las
mezclasdemuestrasamplificadas.Posteriormente,lasmues-
tras se separaron con electroforesis en gel de poliacrilamida
al 10%, durante 90 minutos a 120 voltios. Para cada corrido
seincluyóuncontrolpositivoquecorrespondíaaunpaciente
homocigoto para la mutación F508del, un control negativo
homocigotoparaelalelonormalyunblancodereactivos.Los
gelessevisualizaronbajoluzultravioletateñidosconbromuro
deetidioylosresultadossedocumentaronmediantefotogra-
fíaenmediodigital.
Determinación de la sensibilidad de la técnica. Se
hicieron agrupamientos aleatorios de 5, 10 y 20 muestras
de sangre obtenida en papel de filtro S&S903 de controles
homocigotosparaelalelonormal.Acadaagrupamientose
le adicionó un control heterocigoto para la mutación
F508del.
Además de identificar el número mínimo óptimo de
muestrasenunagrupamientoquepermitieraidentificarla
presencia de un solo cromosoma portador de la mutación,
seanalizólasensibilidaddelatécnicamediantelarelación
S=a/(a+b), donde a son los verdaderos positivos y b son
los falsos negativos15
.
Lasensibilidadobtenidasecomparóconladetermina-
da en la técnica PCR-heterodúplex simple descrita por
Raskin et al.13
Determinación de la especificidad de la técnica. La
especificidad se evaluó mediante la identificación de
resultados falsos positivos, en diez agrupamientos com-
puestos por muestras de los controles sanos, negativos
para la mutación F508del. Los resultados obtenidos se
compararonconlaespecificidaddeterminadaparalaPCR
heterodúplexsinagrupamientos.
Determinación de la reproducibilidad de la técni-
ca. Un agrupamiento compuesto por 10 muestras de
controleshomocigotosparaelalelonormalmásunhetero-
cigotoparalamutaciónF508del,seevaluóbajolasmismas
condiciones de PCR-heterodúplex por agrupamiento en
10 ensayos independientes.
Comparación de los métodos. Una vez estandarizada
la técnica, se tipificaron 400 muestras de sangre en papel
defiltroorganizadasen40agrupamientos(de10muestras
cada uno) y se procedió a su análisis mediante PCR-
heterodúplex por agrupamiento, además, estas 400 mues-
trashabríansidopreviamentetipificadascomohomocigotas
para el alelo normal, en forma individual con la técnica de
PCR-heterodúplex simple descrita por Raskin et al.13
En cada uno de los ensayos se incluyó un control
heterocigoto para la mutación y los hallazgos de los
ensayos de agrupamiento se compararon con la técnica
PCR-heterodúplexsimple.
RESULTADOS
La estrategia para identificar a los portadores de la
mutación F508del en un programa masivo de filtrado, se
basaenlaformacióndeheterodúplexenlosagrupamientos
de muestras que contienen por lo menos un cromosoma
mutante. Durante la reacción de denaturación y renatu-
ración de estos grupos, se forman dos tipos de moléculas,
los homodúplex y los heterodúplex. Los homodúplex co-
rresponden a la hibridación de dos cadenas normales o de
dos cadenas mutadas, mientras que los heterodúplex se
forman por la hibridación estocástica de una cadena de
ADN normal y una cadena mutada, que lleva a la forma-
ción de un bucle en una de las cadenas, cuya movilidad
electroforética es diferente a la de los homodúplex16,17
.
Determinación de la sensibilidad de la PCR hetero-
dúplex por agrupamiento. El análisis de los geles de

179
poliacrilamida para los agrupamientos de 5 y 10 muestras
demostró la presencia de las bandas correspondientes al
alelonormal(92pb),alalelomutante(89pb)yaloshetero-
dúplex. En el agrupamiento de 20 muestras no fue posible
descubrirlamuestraheterocigota(Figura1),loquepermi-
tió establecer el límite de sensibilidad de la técnica en
máximo 10 muestras (20 cromosomas). Se observó una
mayor intensidad de la banda correspondiente al alelo
normal con respecto a las otras, lo que es consecuencia de
la mayor concentración de ADN del alelo normal (10 ó 20
cromosomas) con respecto al mutado (1 cromosoma).
De40agrupamientos(de9muestrashomocigotaspara
elalelonormalmásunamuestradeuncontrolheterocigoto
para la mutación F508del), no se detectó el cromosoma
mutado en tres. Estos resultados permiten estimar que la
sensibilidad de la técnica fue 92.5%. Para la PCR-hetero-
dúplex simple se determinó una ausencia total de falsos
negativos, e indicó una sensibilidad de 100%. Con el
programa Epi-Info 6 se determinó un valor predictivo
positivo de 100% y un valor predictivo negativo de 92%.
Determinación de la especificidad de la técnica. En
el análisis de 10 agrupamientos de personas con genotipo
normal mediante PCR heterodúplex por agrupamiento no
seencontróningúnresultadofalsopositivo,puesseobtuvo
en todos los agrupamientos una única banda correspon-
diente al alelo normal de 92pb. Esto permite determinar
que esta técnica tiene una especificidad de 100%, si se
tiene en cuenta que los primers o cebadores sólo amplifi-
caron el segmento de interés.
Determinación de la reproducibilidad de la técni-
ca. Este parámetro se evaluó mediante repeticiones de
montajes de PCR seguidos de la formación de hetero-
dúplex empleando agrupamientos de muestras idénticas.
El análisis fue realizado 10 veces independientes, y se
obtuvieron los mismos resultados en cada proceso, luego
se utilizó la prueba de concordancia Kappa no ponderada,
y se alcanzó un valor de concordancia de 100%, Kappa de
1 y un valor p<0.000001 (Cuadro 1).
Comparación de los métodos. En las 400 muestras
analizadas se compararon los resultados obtenidos me-
diante la técnica PCR-heterodúplex por agrupamiento y
otrosmétodosyavalidadoscomoPCR-heterodúplexsim-
ple e hibridización con sondas alelo específicas (ASO)
paralaidentificacióndelamutaciónF508del.Seprocedió
al análisis estadístico mediante una prueba de concordan-
cia Kappa no ponderada, con valores de concordancia
entre 99.2% y 100%, respectivamente, con un valor
p<0.00001 en ambas comparaciones (Cuadro 2).
Figura 1. Técnica PCR-heterodúplex por agrupamiento. 1. Control positivo, homocigoto para F508del (89pb);
2. Control negativo, homocigoto para el alelo normal (92pb); 3. Agrupamiento de cinco muestras más un
heterocigoto (5+); 4. Agrupamiento de cinco muestras (5); 5. Marcador de peso molecular de 10pb;
6. Agrupamiento de 10 muestras más un heterocigoto (10+); 7. Agrupamiento de diez muestras (10);
8. Agrupamiento de 20 muestras más un heterocigoto (20+); 9. Agrupamiento de 20 muestras; 10. Blanco de
reactivos.
Cuadro 1
Prueba de concordancia Kappa no ponderada entre la
técnica heterodúplex por agrupamiento,
con heterodúplex simple y la hibridización con ASO
Método comparado Heterodúplex Hibridización ASO
simple
Concordancia observada 99.3% 100%
Coeficiente Kappa 0.82 1
Error estándar 0.049 0
Valor p <0.000001 <0.000001

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DISCUSIÓN
La FQ es una enfermedad autosómica recesiva letal
que afecta gran cantidad de poblaciones alrededor del
mundo. En Colombia no se conoce su frecuencia real, ni
la de los portadores de la mutación F508del, que es la más
frecuentemente asociada con esta entidad. Un par de
estudiospreliminaresinformaronunafrecuenciadeporta-
dores cercana a 1 en 6511,12
, valor que justifica la necesi-
dad de emprender estudios en un mayor número de
personas en diversas regiones del país para lograr así dar
conclusiones precisas sobre esta frecuencia e incluso
obtener cálculos del número probable de nuevos casos de
afectados con la enfermedad.
ElanálisismoleculardelaF508delsehavistocomoun
método diagnóstico de portadores y afectados en varias
poblaciones del mundo para descubrir en el primer caso,
las parejas en riesgo de tener hijos afectados, ofrecer
adecuados asesoramientos genéticos y en el segundo caso
conseguirundiagnósticotempranoquepermitaestablecer
medidas que mejoren la calidad y el pronóstico de vida de
los afectados.
Por lo general, los estudios moleculares se han hecho
a través de PCR seguida de análisis electroforético, que
permiteidentificarportadoresgraciasalavisualizaciónde
las bandas de amplificación del alelo normal y el mutado,
que muestran 3 bases de diferencia, y de la banda del
heterodúplex, que migra más lentamente. Dada la cerca-
níadelamutaciónI507delalsitiodelamutaciónF508del,
noesposiblemediantePCRdiferenciarhomocigotospara
una u otra mutación, lo que podría llevar a errores de
genotipificación molecular. En el presente trabajo, se
efectuó un análisis de heterodúplex posterior a la PCR,
mediantedesnaturalizacióndelosproductosamplificados
obtenidos, que permite diferenciar las personas hetero y
homocigotas para estas dos mutaciones, debido a la
formación de bandas de migración lenta, producto de
interacciones no covalentes entre fragmentos distintos de
ADN, con cambios en su conformación que resultan de la
complementariedadincompletadelashebrasnoidénticas.
Esta metodología, tiene también ventajas sobre otras,
como la PCR alelo especifica, pues en esta última se usa
mayor cantidad de primers (tres en total, para identificar
elalelonormalyelmutado)yrequieredemontajedetubos
de PCR que por separado identifiquen el alelo normal y el
mutado, además, se correría el riesgo similar al uso de
PCR de no diferenciar las mutaciones F508del e I507del.
Si se tienen en cuenta las consideraciones de la aplica-
ciónmasivadeanálisismolecularesparaidentificarmuta-
cionescomolaF508del,esimportantebuscaralternativas
quepermitandisminuircostosenlosprocesosmantenien-
do estándares de calidad adecuados en términos de sen-
sibilidad y especificidad. El uso de agrupamientos de
muestras,permiteenunsolopasoanalizarvariaspersonas
en búsqueda de los portadores, y aun de los afectados,
disminuye hasta en 80% la cantidad de reactivos necesa-
riosparalaamplificaciónyen90%elcostodelosprocesos
de post-PCR. De igual forma, el tiempo necesario para el
procesamiento de las muestras en una forma masiva es
considerablemente inferior, porque para procesar 1000
muestras por métodos convencionales se necesitarían 3
meses aproximadamente, mientras que por la técnica
PCR-heterodúplex por agrupamiento todo el proceso tar-
daría alrededor de 5 días.
Para evitar los pasos de la extracción del ADN con-
vencional que aumentan los costos y el tiempo de proce-
samiento, se ejecutó la técnica de liberación de ADN
basada en calor y el empleo de reactivos como el Chelex,
al que se le ha atribuido una gran capacidad quelante para
extraer ácido nucleico; aun así la sensibilidad que se
informa en este estudio fue 92.5%, ya que en tres de 40
agrupamientos(quecorrespondenalanálisisde400mues-
tras) a los que se había introducido un heterocigoto tipi-
ficadoantesmolecularmente,nosedetectóelcromosoma
mutado; esto pudo ser el reflejo de una inadecuada libe-
ración de ADN o de la presencia de impurezas en la
muestraanalizada,principalmentehemoglobina,compuesto
que se ha asociado como un inhibidor de procesos de
amplificación; este riesgo, es inherente a la metodología
propuesta, pues al no usar técnicas de extracción conven-
cionales de ADN, la calidad y cantidad de ADN liberado
seafecta.Unaposiblesoluciónaestalimitante,quepodría
disminuir los inhibidores es el uso de limpiezas previas al
paso de liberación de ADN por calor y chelex, mediante
Cuadro 2
Comparación de los resultados obtenidos para
cada uno de los agrupamientos realizados
Muestras por + - Sensibilidad Especificidad
agrupamiento (%) (%)
1 (simple) 10 390 100 100
5 10 390 100 100
10 7 393 92.5 100
20 0 400 0.0 100

181
el uso de detergentes como el dodecil sulfato de sodio
(SDS),cuyafunciónsehaasociadoconelrompimientode
bicapas lipídicas de las membranas y con la unión a las
cargas positivas de las proteínas cromosómicas liberando
el ADN a la solución acuosa.
Mediante la técnica de PCR-heterodúplex por agrupa-
mientos, se obtuvieron bandas de amplificación específi-
cas para la mutación F508del en el exón 10 del gen CFTR,
lo que se evidenció mediante electroforesis, por la visua-
lización de bandas de peso molecular acorde con lo
esperado; este hallazgo permite atribuir a la metodología
una especificidad total, que evitaría falsos positivos. El
análisisposteriorconheterodúplex,obviaelriesgometodo-
lógico más grande que se tiene, por la cercanía de la muta-
ciónI507del.
La realización de PCR «in situ», y como no se efectuó
unprotocoloconvencionaldeextraccióndeADN,demos-
tró una excelente reproducibilidad, pues al analizar dife-
rentes sacabocados de 1 mm de las mismas muestras en
10ensayosdistintos,seobtuvieronlosmismosresultados,
loqueindicaque,bajoanálisisestandarizados,laliberación
de ADN y la eficacia de amplificación se mantienen
constantes; este punto es de gran importancia porque en
análisis masivos, es indispensable mantener valores de
sensibilidad y especificidad que repercutan en un óptimo
costo-beneficio de la prueba en la identificación de porta-
dores de esta enfermedad genética.
En relación con el futuro, la puesta en marcha de esta
metodología, permitirá llevar a cabo estudios masivos en
búsqueda de los portadores de la mutación F508del en las
diferentes regiones del país, con el fin de conocer en
cuáles zonas se presenta un mayor número de portadores
de esta mutación y por ende un mayor riesgo de nuevos
casosdeafectadosconfibrosisquística.Asípodríaincluso
justificarselaejecucióndeunfiltradogenéticoneonatalen
recién nacidos, más aún si se tiene en cuenta que está
plenamenteconfirmadoqueelcostoparalaidentificación
de portadores y afectados es menor que los costos del
tratamiento de la enfermedad19
.
Con este objetivo, esta estrategia molecular, represen-
ta un complemento a la medición de tripsina inmuno-
reactiva, que no permite identificar portadores sanos y
ademásgeneramuchosfalsospositivosquevanencontra-
vención del costo beneficio necesario en un programa de
filtrado20
. Sin embargo, se debe tener en cuenta que
aunque la mutación F508del es la más frecuente en
Colombia, estos programas de filtrado neonatal se debe-
ríancomplementarconelestudiodemutacionesadiciona-
les seleccionadas según las frecuencias mutacionales
informadas para cada una de las regiones del país12
.
La realización de la PCR-heterodúplex por agrupa-
miento a partir de manchas de sangre en papel filtro, el
mismoqueseutilizaenlosprogramasdefiltradoneonatal
parahipotiroidismocongénito,facilitalaejecucióndeesta
prueba para identificar portadores y afectados por la
mutación F508del. En este trabajo se demuestra que por
la alta sensibilidad, reproducibilidad y especificidad de la
técnica empleada, se convierte en una herramienta ade-
cuada que cumple con los criterios técnicos que se deben
considerar en su aplicación como método de filtrado. La
correlación obtenida entre los resultados que se alcanza-
ron con esta técnica y las metodologías ya validadas, hace
que esta prueba sea confiable, con un porcentaje de falsos
positivosynegativosmuybajo,loquegarantizaasíqueno
se presenten errores de diagnóstico.
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