483607911-MUESTRAS-BIOLOGICAS.pptx
- 1. Nancy Catunta Liliana Cuellar Edwin Mamani Britania Flor Yeheral Rodriguez Luis Opi Monica Aramayo Jhomara Pardo Dicla García Joel Pereira Rosmey Matha
- 3. Desde que el médico requiere una muestra de un paciente hasta que evalúa los resultados de ésta, hay que seguir un proceso, el cual, podemos resumirlo en cuatro fases:
- 4. Es importante que en estas fases no se cometan errores que puedan falsificar los resultados de la analítica, es por ello, por lo que debemos hacer bien nuestro trabajo y procurar obtener bien la muestra. Además, aunque no seamos nosotros los responsables de la obtención por el tipo de muestra que sea, por ejemplo de sangre, sí intervendremos en el proceso de preparación al paciente y el material necesario, ayudando en el procedimiento, recogiendo el material y acomodando al usuario o usuaria al terminar el proceso.
- 5. Hay diferentes tipos de muestras biológicas: orina, heces, esputo, sangre, .. las que más frecuentemente recojamos serán las de orina por la información diagnóstica que puede obtenerse sin ser una muestra invasiva, lo que facilita su obtención y la disponibilidad del paciente para ello. No obstante aquí estudiaremos las diferentes técnicas de recogida que podamos encontrarnos.
- 8. VENTAJAS Y DESVENTAJAS VENTAJAS SANGRE DESVENTAJAS Útil para el estudio de gases y sustancias volátiles, para la identificación de tóxicos ácidos Los tóxicos orgánicos básicos alcanzan concentraciones muy bajas en la sangre, siendo difícil su detección. ORINA FACIL DE TOMAS Y NO INVASIVO CONTAMINACION FRECUENTE
- 9. Requiere dos visitas a la clínica El diagnóstico toma al menos de 2 a 3 días Alta carga de trabajo Alto riesgo de perder un caso si solamente se recibe la primera muestra Una muestra del paciente está disponible en caso que el paciente no regrese con la muestra de la mañana ESPUTO Un resultado Negativo no descarta Intoxicación. Resultados no indican Grado de Intoxicación ya que se refieren al Tóxico no Absorbido. Puede encontrarse cápsulas o tabletas enteras de fácil identificación. Tóxico en elevada concentración y sin metabolizar, lo cuál facilita su detección. CONTENIDO GASTRICO
- 10. Toma de muestra de sangre Extracción utilizando soluciones no alcohólicas Recipientes de plástico o vidrio con tapón de goma, en lo posible precintado para cierre hermético. Agregar fluoruro de sodio al 1%.
- 11. Pacientes vivos 10 ml de sangre con heparina
- 12. Cadaveres Sangre de arteria femoral (10 ml) Sangre de cavidades cardíacas (25 a 50 ml) Sangre periférica (niños mayores)
- 13. CANTIDAD DE SANGRE DEPENDE DE: • Sustancias a investigar • Método analítico que se va a utilizar • Posibilidades de repetición • Resguardo legal de una reserva para re-pericias. La cantidad de muestra apropiada dependerá del método analítico disponible y de la cantidad de analitos diferentes que deban investigarse
- 14. Procedimiento para su recolección: Se deberá recoger la muestra de sangre en dos tubos, uno de ellos con anticoagulante (EDTA) y otro tubo sin anticoagulante. El volumen mínimo recomendable en cada caso será de 10 mL. Tomar 20 mL de sangre con una jeringa y dividir el contenido en ambos tubos. Los recipientes utilizados para recoger las muestras deben ser tubos de polipropileno o similar con cierre hermético, de tapa a rosca y sellados con cinta adhesiva. Es conveniente utilizar material nuevo o virgen, para evitar contaminaciones. Sangre (20 mL) 10 mL con Anticoagulante (EDTA) ** 10 mL sin Anticoagulante ***
- 15. PRESERVACIÓN: Las muestras deben estar exentas de contaminación química externa (polvo, pelos, tierra, etc), Las muestras deben ser congeladas a -20ºC inmediatamente tras su recolección y enviadas manteniendo estas condiciones hasta su llegada al laboratorio. La única excepción a esta regla se da en la muestra de sangre, la cual se mantendrá a temperatura de refrigeración (aproximadamente +4ºC) Cada muestra debe ir contenida en un recipiente independiente (tipo envase de muestras de orina o bolsa de plástico con cierre ziploc) Todos los contenedores deben estar herméticamente cerrados, tanto si son bolsas o envases de plástico. En el caso de muestras en las que se deban determinar niveles traza de compuestos orgánicos tipo PCBs o plaguicidas podría usarse papel de aluminio para envolver la muestra antes de su introducción en el envase.
- 16. En general con agregado de Na F y refrigeración es satisfactorio para una gran gamma de tóxicos. Para drogas de abuso (ej: cocaína) requiere además pH ácido. En caso de compuestos volátiles, tales como amonio o intoxicación por cianuro, se debe congelar inmediatamente el contenido ruminal, sangre y suero tras la toma, con el fin de evitar su pérdida por volatilización. v Todos los envases
- 17. ORINA
- 19. MUESTRA DE ORINA
- 21. PRUEBA DE DETECCIÓN DE DROGAS EN ORINA Pack Básico: detección de cocaína y Marihuana Pack Completo: detección de Anfetaminas ; Cocaina ; Cannabis.,Benzodiacepinas, Antidepresivos Tricíclicos, Barbitúricos, Metanfetamina, Morfina, Metadona, Extasis,
- 22. ORINA • Ventajas: - altas concentraciones de tóxico - posibilidad de empleo de inmunoensayos - disponibilidad de gran cantidad de muestra - no necesita la adición de conservantes • Inconvenientes: - no correlación con el estado clínico
- 23. Drogas de abuso Definición.- Es el uso de drogas ilícitas o uso de medicamentos de venta con receta medica o de venta libre, con fines diferentes a los que están destinados o para su consumo en cantidades excesivas.
- 24. Clasificación: • Azul.- drogas depresoras • Amarillo.- drogas estimulantes • Verde,. Drogas alucinógenas • Morado.- drogas con efecto alucinógeno o estimulante Tiempo de detección normal • Cocaína 2 a 3 días • Cannabis sativa 3 a 5 días para el consumidor • Ocasional 14 días para el consumidor • Crónico 30 días gran uso crónico • Benzodiazepina 2 a 7 días dependiendo de la benzodiazepina • Anfetaminas 3 a 5 días
- 25. Contenido gástrico Es el procedimiento que se usa para limpiar el estomago de sangre, venenos, toxicos u otras sustancias ; un tubo es insertado en el estomago y atreves de este se irriga fluidos que posteriormente se extraen para remover el material que pueda estar contenido dentro del órgano. El análisis gástrico de ácido puede ser cualitativo o cuantitativo. El análisis cualitativo tiene por objeto determinar si el estómago es capaz de producir ácido clorhídrico y permite diferenciar algunas condiciones que se presentan con una sintomatología parecida.
- 28. PELOS COMO MATRIZ DE ANALISIS ESTRUCTURA QUIMICA 70% agua 28% proteínas 2% lípidos ESTRUCTURA Y MORFOLOGIA Cutícula o escamas Corteza o córtex medula
- 29. PELOS COMO MATRIZ DE ANALISIS MUESTRA LABORATORIO OBSERVACION MICROSCOPICA Y LIMPIEZA EXAMEN DEL PELO EN CRIMINALISTA
- 30. PELOS COMO MATRIZ DE ANALISIS 1. ORIGEN DEL PELO PELO HUMANO O ANIMAL HUMANO ANIMAL Canal medular Red área granulosa Células medulares indivisible Índice medular 0,30 Pelo del vello sin medula Contiene área mas o menos voluminoso Células medulares aparentes Índice medular 0,50 Medula en escalones en los pelos del vello Sustancia cortical Forma un grueso manguito Pigmento en granulaciones Constituye un cilindro hueco Pigmento en granulaciones irregulares Cutícula Escamas delgadas poco salientes Pequeña e imbricadas Escamas gruesas, salientes menos imbricadas que en el hombre
- 31. PELOS COMO MATRIZ DE ANALISIS 2.DETERMINACION DE LA RAZA 3.SEXO DEL INDIVIDUO 4.GRUPO SANGUINEO
- 32. PELOS COMO MATRIZ DE ANALISIS 5.REGION DEL CUERPO 6.CABELLO TEÑIDO 7.CABELLO CORTADO, CAIDO O ARRANCADO 8.ENFERMEDAD DEL PELO
- 33. PELOS COMO MATRIZ DE ANALISIS ANALISIS DEL CABELLO POR: ENSAYO ENZIMATICOS (invasiva) ACTIVACION NEUTRONICO (no invasiva)
- 50. El toxico no detectado puede deberse: Defecto del método analítico (extracción). Descomposición del toxico. Eliminación del toxico antes de la muerte. INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
- 51. DIFERENCIAS INDIVIDUALES Diferente sensibilidad de los receptores. Diferente capacidad de las proteínas plasmáticas Diferente adaptación metabólica ACCIÓN DE MÁS DE UN XENOBIÓTICO EL CUÁL POR SINERGIA, POTENCIACIÓN O ANTAGONISMO INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
- 52. COMPARACIÓN ERRÓNEA DE DIFERENTES FÁRMACOS RELACIONADOS QUÍMICAMENTE INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS DIFERENTE FARMACODINAMIA DE UN FÁRMACO EN FUNCIÓN DE LA HORA DEL DÍA O DE LA ÉPOCA DEL AÑO EN QUE SE ADMINISTRA.
- 53. INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS DIFERENCIAS DEBIDAS A LAS TÉCNICAS ANALÍTICAS Diferencias en la sensibilidad y exactitud Diferencias entre las técnicas analíticas que distinguen entre xenobióticos y metabolitos y las que no Técnicas analíticas que emplean como referencias disoluciones acuosas del producto.
- 54. DIFUSIÓN POSTMORTEM INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS SÓLO PARA CIERTAS SUSTANCIAS HAY SUFICIENTE SOPORTE ESTADÍSTICO
- 55. RECORDAR la muestra para análisis toxicológica debe recogerse tomando en cuenta condiciones También considerar la calidad, cantidad de la conservación de la muestra
- 56. RECORDAR los tóxicos gaseosos o volátiles se debe evitar que contenga cámara de aire en el frasco, debe ser herméticamente bien cerrados. No añadir conservantes en muestras evitar conservar muestras de vísceras con formol para análisis toxicológico
- 57. SELECCIÓN DE LA MUESTRA Selección, la preparación y remisión de acuerdo al análisis solicitado
- 58. CANTIDAD DE LA MUESTRA La cantidad de la muestra de acuerdo al análisis solicitado y método a ser realizado. • Sangre tubo seco 5 cc, • orina 50 ml • contenido gástrico 25 ml ENVASADO Y CONSERVACIÓN Colocar cada tipo demuestras en recipientes individualizados Se debe disponer de refrigeradores con una temperatura 2 a 8 ºC
- 59. ETIQUETA DE LA MUESTRA Cada muestra debe estar rotulado con letra clara y legible • Nombre y apellido • Fecha • Hora • Tipo demuestra CADENA CUSTODIO Es un procedimiento escrito que garantice la integridad de la muestra en condiciones optimas