Capítulo 2

Manual de Técnicas Analíticas en el Laboratorio de Toxicología
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Capítulo 2
Recolección y almacenamiento de las muestras en el
laboratorio de toxicología clínica y forense
Autor: Dr. Luis Alberto Ferrari. Catedrático de Toxicología y Química Legal en la
Universidad de Morón. Perito Químico Judicial.
Introducción
En la actualidad, el laboratorio de toxicología se encuentra con un gran número de
muestras biológicas conteniendo sustancias en concentraciones al nivel de trazas. La
investigación para analitos desconocidos se lleva a cabo mediante la denominada marcha
sistemática toxicológica. La adecuada elección, recolección y envío de las muestras es de
fundamental importancia ya que la calidad de un resultado nunca puede ser mejor que el de la
muestra.
Para la determinación de los diferentes tóxicos suelen emplearse con mayor frecuencia
muestras biológicas como orina, sangre, contenido estomacal y vísceras en casos forenses.
También el pelo, la saliva y las uñas están siendo hoy en día consideradas como matrices
alternativas de gran importancia en el análisis toxicológico.
Para la recolección de la muestra se deben proporcionar instrucciones detalladas a las
personas o entidades encargadas, las cuales deben incluir el tipo y la cantidad mínima
requerida, tipo y cantidad de conservante que se debe añadir, la forma de etiquetado de los
contenedores y las condiciones de empaquetado y transporte.
A continuación se describen los procedimientos necesarios para la toma de muestra
destinadas al laboratorio de toxicología clínica y a las destinadas a un laboratorio pericial.
2.1 Recolección y almacenamiento de las muestras en el laboratorio
de toxicología clínica
La toma de muestra para un laboratorio de toxicología clínica es de vital importancia
para lograr una adecuada identificación y cuantificación posterior.
El tipo de muestra analizada debe ser identificada con el nombre completo del paciente,
el día y hora de recolección así como la naturaleza de la muestra aunque sea evidente. Esto
resulta importante si gran número de pacientes han sido afectados en un accidente o cuando
se obtienen varias muestras del mismo paciente. Todas las muestras biológicas deben ser
almacenadas a 4 ºC previo al análisis y mantenidas a 4 ºC durante 3 a 4 semanas en el caso
en que se requieran futuros análisis. En los casos de implicancias médico legales la muestra a
analizar debe ser almacenada a –20ºC hasta que la investigación haya concluido.
La disponibilidad del material biológico es un punto importante a considerar. La elección
de la muestra esta estrechamente vinculada con la toxicodinámica del analito buscado.
Mediante el conocimiento de su distribución, metabolismo y eliminación se han diseñado
técnicas analíticas orientadas a la búsqueda de la droga madre y/o sus metabolitos para su
identificación y si fuera necesario, su cuantificación.
Por otra parte, la vinculación entre el caso clínico y el analista es de vital importancia
para los resultados del análisis toxicológico. Idealmente esta relación debe comenzar antes que
la muestra sea recolectada indicando algún requerimiento especial en algunos casos para la
toma de muestra.
Antes de empezar un análisis es importante conocer, en la medida de lo posible,
información acerca del paciente (tiempo transcurrido entre la ingestión o exposición al
tratamiento médico, la recolección de la muestra, resultados de laboratorio en ensayos clínicos,
la sintomatología y las características sociales, ocupacionales y cualquier otro dato que pudiera
recabarse, ya que ello condiciona la interpretación de los resultados.
La muestra de orina se encuentra disponible en gran cantidad y generalmente contiene
mayor concentración de drogas u otros venenos que la sangre. La presencia de metabolitos
puede ayudar a la identificación cuando se emplean técnicas cromatográficas. Para un adulto,

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se requieren un mínimo de 50 ml de orina que debe ser recolectado en un recipiente sellado,
estéril y sin agregado de preservadores. La muestra debe ser tomada tan rápido como sea
posible, de preferencia antes del inicio de tratamiento terapéutico. Sin embargo, ciertas drogas
tales como los antidepresivos tricíclicos (amitriptilina, imipramina) causan retención urinaria y
una toma de muestra muy temprana puede contener cantidades no detectables de droga.
Contrariamente, una pequeña cantidad de sustancias tóxicas pueden encontrarse luego de
algunas horas o días de producida la intoxicación como en el caso de una intoxicación con
paracetamol.
Las muestras de orina también resultan óptimas para la marcha sistemática tendiente a
determinar drogas de abuso entre las que se incluyen cocaína, anfetaminas, opiáceos,
barbitúricos, benzodiacepinas. Puede requerirse orina de 24 hs. o una única micción con un
mínimo de 50 ml. Para la determinación de psicofármacos (antidepresivos tricíclicos,
fenotiazinas, butiferonas, dibenzacepinas, anfetaminas, anticonvulsivantes, opiáceos,
barbitúricos y benzodiacepinas) la muestra de elección también es la orina de 24 hs pudiendo
también determinarse en una única micción de 50 ml. Para estos últimos casos (drogas de
abuso y psicofármacos) las muestras de orina deben ser llevadas lo antes posible al laboratorio
pudiendo permanecer hasta un máximo de 5 días en refrigeración.
Para la determinación de marihuana (cuyo principio activo es el tetrahidrocanabinol) en
muestras de orina esta debe recolectarse durante 24 hs y puede ser almacenada durante 15
días en refrigeración y de 4 a 6 meses bajo congelación. También las muestras de orina son
excelentes matrices para determinar fenoles requiriéndose orina de 24 hs, siendo su
conservación de hasta 6 meses en refrigeración si se agrega ácido acético al 1%.
En el caso de los metales, debido a la eliminación circadiana que presentan muchos de
ellos (As, Hg, Cu, Cr, Tl y Pb), se prefiere su estudio en muestras de orina de 24 hs. En general
las muestras de orina pueden ser tomadas en recipientes comunes limpios, a excepción de la
determinación de plomo (el recipiente que debe ser tratado con ácido nítrico 1:1 durante 24 hs
y luego enjuagado escrupulosamente con agua bidestilada para eliminar posibles impurezas).
Para la determinación de coproporfirinas totales en orina (indicadores de exposición a plomo)
las muestras corresponden a orina de 24 hs que debe ser recolectada en un frasco oscuro
conteniendo carbonato de sodio como conservador en cantidad suficiente para una
concentración final de 0,1 – 0,5%. Para la determinación de ácido delta amino levulínico (-
ALA, marcador biológico de exposición al plomo) se requiere orina de 24 hs recolectada en
frasco oscuro conteniendo solución saturada de ácido tartárico aproximadamente 1 ml/ 100 ml
de orina. Su conservación debe realizarse en refrigeración por un máximo de 7 días siendo el
pH no superior a 10.
Otro tipo de muestras utilizadas en la toxicología clínica son las de sangre.
Las muestras de sangre (plasma o suero) son generalmente empleadas para los análisis
cuantitativos de algunas sustancias tóxicas como el monóxido de carbono y plomo, siendo un
volumen adecuado 10 ml de muestra con heparina. Para la determinación del monóxido de
carbono en sangre la muestra puede obtenerse y conservarse en jeringa heparinizada
pudiendo mantenerse durante 3 días a temperatura ambiente o en refrigeración. En este caso
hemos notado que el análisis mediante cooximetría presenta dificultades por taponamiento del
sistema tubular de recolección de sangre entera en muestras con más de 48 horas desde la
toma de muestra.
Para el análisis de alcohol (etanol, metanol y otros alcoholes) en sangre, se requiere al
menos de 2 ml de sangre en un tubo que contenga oxalato o fluoruro para su conservación
pudiendo mantenerse refrigerada durante 15 días. El espacio de aire superior entre la sangre y
el tubo (headspace) debe ser mínimo si se debe analizar una muestra en la que se sospecha
una intoxicación con monóxido, ácido cianhídrico o si se desea calcular el alcohol en sangre de
un individuo.
Las muestras de sangre también pueden ser requeridas para algunos metales como el
cadmio, plomo, cromo o litio colectándose en jeringa heparinizada pudiendo conservarse hasta
7 días a temperatura ambiente. La determinación de -ALA dehidratasa debe ser realizada en
sangre tomada en jeringa heparinizada siendo trasladada rápidamente al laboratorio (no más
de 2 o 3 horas). El plomo es un caso particular, debido a que se requiere un conjunto de
ensayos conocidos como perfil plúmbico en el cual para la realización del diagnóstico es
necesario incluir las determinaciones de plomo en orina, sangre, la enzima delta ala

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dehidratasa en sangre así como ácido delta aminolevulínico y coproporfirinas en orina obtenida
como fue anteriormente descripto.
El monitoreo de drogas terapéuticas se realiza en el suero o plasma debido a que la
concentración en la circulación es el parámetro de importancia.
Los plaguicidas organoclorados pueden ser analizados en sangre tomada en jeringa
heparinizada en el cual el paciente requiere ayuno no menor de 8 hs, pudiendo las muestras
conservarse en refrigeración durante 1 mes o 3 meses en condiciones de congelación. Los
pesticidas de tipo organofosforados pueden ser determinados de manera sencilla en forma
indirecta mediante la medición de la actividad de las colinesterasas en sangre no hemolizadas.
La determinación de la colinesterasa eritrocitaria o sérica se realiza sobre una muestra
de sangre con anticoagulante, plasma o el paquete celular luego de una centrifugación. La
muestra de sangre debe ser trasladada al laboratorio dentro de las 6 hs de extraída o bien si es
plasma puede ser conservada durante 4 días en refrigeración o 7 días en congelación.
Otro tipo de muestras utilizadas son las de contenido estomacal. Estas pueden incluir
vómito, aspirado gástrico o lavado estomacal. Es importante obtener la primera muestra del
lavado, mientras que la última puede contener escasa cantidad del tóxico. Se requiere al
menos un volumen de 20 ml sin agregado de preservadores para realizar un amplio rango de
ensayos. Las muestras de contenido estomacal pueden ser muy variables y requieren
procedimientos adicionales como ser filtración y/o centrifugación para realizar los análisis. En
general, cuando ha transcurrido más de una hora de la ingestión esta muestra carece de
utilidad debido al vaciado natural del estómago.
Las matrices alternativas como las muestras de cabello han adquirido importancia en
los últimos años debido a las ventajas que presentan respecto de las muestras tradicionales de
sangre y orina. Entre las ventajas se describe el hecho que las drogas o sus metabolitos
permanecen en el pelo un amplio período de tiempo (semanas a meses) respecto de las
matrices tradicionales. Por otra parte, las muestras de pelo son estables indefinidamente,
presenta una forma simple de recolección, no siendo un método invasivo. El análisis en pelo ha
sido aplicado con éxito al análisis de drogas antipsicóticas como haloperidol, en pacientes en
hospitales psiquiátricos. No obstante su uso en clínica sigue siendo restringido hasta hoy, dado
que pocos fármacos han sido suficientemente estudiados para establecer correlaciones entre
concentración en pelo versus dosis administradas.
Una amplia variedad de drogas de abuso (cocaína, opiáceos, anfetaminas,
cannabinoles y fenciclidina) han sido determinadas en pelo humano. Además el análisis en
pelo permite diferenciar entre una exposición ambiental y el uso activo de las drogas mediante
la cuantificación correspondiente. Asimismo, permite también conocer la cronología del
consumo analizando diferentes segmentos a diferentes distancias del origen (folículo piloso).
En los últimos años se ha prestado interés al estudio de ciertas drogas en muestras de
uñas debido a su similitud con las muestras de pelo ya que muchos tóxicos suelen acumularse
en dichas matrices. Se han estudiado las uñas como matriz para la investigación de drogas de
abuso durante períodos prolongados así como en los exámenes forenses. Las drogas
principalmente estudiadas han sido metanfetaminas y cocaína.
Recientemente se ha informado sobre la detección de algunas drogas de abuso y
psicotrópicos en médula ósea y ciertos huesos, como los de la cresta ilíaca. Inclusive se ha
detectado cocaetileno, especie química indubitable del consumo conjunto de cocaína y etanol.
Por último, también otros fluidos biológicos han concentrado el interés forense como
la saliva, sudor, líquido cefalorraquídeo y líquido amniótico pero su empleo como material
para la extracción de drogas se encuentra en etapas de desarrollo.
La cadena de custodia debe empezar en el momento de la toma de muestra. La
cadena de custodia incluye a los procedimientos que deben quedar por escrito en la
documentación referidos a cualquier manipulación o transporte de la muestra desde un
individuo o lugar a otro, así como intentar minimizar en lo posible el número de personas que
manipulen la muestra.
En capítulos adjuntos se analiza con detalle la toma de muestra y su conservación para
cada grupo de tóxicos que se presentan en un laboratorio de toxicología así como para
muestras vinculadas con la toxicología legal.

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2.2 Toma y remisión de Muestras en el Análisis Toxicológico
Forense
La adecuada selección, recolección, preservación y envío de especimenes biológicos y
cualquier otra muestra con el propósito de una investigación toxicológica forense es
sumamente importante. El éxito de un estudio analítico y su interpretación dependen en gran
parte de esta etapa.
Es cierto que no todo estudio analítico toxicológico en la esfera clínica debe concluir
necesariamente en el ámbito forense. No obstante los casos de resonancia pública acaecidos
en las dos últimas décadas nos han enseñado a movernos con prudencia en este sentido. Es
decir, la posibilidad que estos estudios terminen debatiéndose en un estrado judicial.
Cada laboratorio debe dar instrucciones precisas sobre el tipo de matriz que debe
recolectarse y su cantidad mínima necesaria (según la metodología que aplicará) que
contemple una muestra adicional para repetición del análisis, si este fuera requerido con
posterioridad.
La información básica que debe consignarse para casos de análisis post-mortem incluye
un informe de autopsia minucioso, indicando los mínimos detalles de la observación
macroscópica.
 Historia Clínica (especialmente en casos mala praxis).
 Drogas que se piensa o se sabe que consumía el individuo antes de morir.
 Profesión ó actividad laboral que desarrollaba.
 Síntomas ó conducta que presentaba el individuo antes de fallecer.
Debe remitirse también todo efecto que se estime pudo estar relacionado con el deceso
de la víctima, como ropas contaminadas u objetos encontrados en el lugar del hecho.
En caso de individuos vivos, consignar todo dato aportado por el mismo paciente o
familiares, tipo de tareas que desarrolla, hábitos alimentarios, etc. El profesional médico
debería expresar sus sospechas, aunque no las considere relevantes. Téngase en cuenta que
el analista se vale mucho de esas observaciones para poner énfasis en la búsqueda de una o
varias sustancias y sus congéneres. Más aún, cuando no se tiene una orientación bien definida
al respecto.
En el ámbito legal, las muestras remitidas pueden ser divididas en diferentes áreas según
sea el estudio posterior que se llevará a cabo:
1) análisis toxicológicos
2) estudios inmunohematológicos
3) análisis anátomo-patológicos
4) estudios en química ambiental
A continuación se describen las muestras con énfasis en el modo de recolección y
almacenamiento de los materiales biológicos.
2. 3 Análisis toxicológico forense
Para la realización de los estudios toxicológicos forense, el tipo de muestras
habitualmente remitidas en caso de individuos fallecidos puede ser: sangre, orina, vísceras,
pulmón, corazón, cerebro, tráquea, hígado, riñón, bazo, tejido adiposo (grasa), pelo
(pericraneal, púbico, axilar), uñas, humor vítreo, bilis.
Es importante que el profesional que intervenga en la toma de muestra seleccione
aquellas que, según la anamnesis, ofrezcan mayor posibilidad de detectar el compuesto que se
presuma involucrado en el caso.
El tipo de muestras que puede obtenerse en individuos vivos incluye sangre o suero,
orina, vómito o aspirado gástrico, pelos, uñas, saliva. La selección de algunas de estas
matrices queda supeditada a la disponibilidad de las mismas o bien al tipo de tóxico
sospechado y sus características farmacocinéticas.
A continuación se describe la forma que consideramos correcta de remitir el material
biológico para estudio.
2.3.1 Vísceras

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Deben colocarse en recipientes rigurosamente limpios, sin agregado de ningún tipo de
sustancia con fines de preservación u otro motivo, especialmente formol. Si pudiera disponerse
de un recipiente para cada órgano sería ideal, pero se acepta en la práctica colocarlos de la
siguiente manera:
(1) recipiente I: para cerebro
(2) recipiente II: para hígado, riñón y bazo
(3) recipiente III: para pulmón y corazón
(4) recipiente IV: para estómago y su contenido
Dichos recipientes pueden ser de vidrio incoloro, pero sería más apropiado disponer de
frascos de vidrio color caramelo, especialmente para sustancias fotosensibles. El cierre debe
ser hermético. Si no es posible deben sellarse con parafina o cinta aisladora. Evitar tapas de
papel o cartón. Pueden utilizarse recipientes plásticos con tapas del mismo material que
permitan un cierre hermético.
El lacrado excesivo de los recipientes conteniendo líquidos debe evitarse debido a que
durante las maniobras de apertura resulta común la caída del lacre dentro del líquido,
contaminando los extractos.
Los frascos mencionados deben colocarse dentro de bolsas plásticas capaces de
cerrarse herméticamente por algún medio, por ejemplo el calor. Actualmente se encuentran
disponibles bolsas plásticas de distintos tamaños con un tipo de cierre inviolable( precinto). Ello
indica que en el caso de pretender abrir los recipientes ya cerrados, se destruye el soporte
permitiendo de este modo detectar las maniobras dolosas de apertura.
Una vez embaladas, deben rotularse correctamente con iniciales o numeraciones
internas del laboratorio que no den lugar a confusión, utilizando tinta firme resistentes a
soluciones acuosas. Es conveniente colocar las bolsas en recipientes apropiados (por ejemplo
cajas de cartón resistentes) asegurando que los recipientes contenidos no puedan sufrir roturas
durante el traslado al laboratorio.
Las muestras deben colocarse finalmente en refrigerador a 4°C. La temperatura ideal es
–20ºC, donde la actividad enzimática en los sistemas biológicos se halla prácticamente
paralizada. Sin embargo, debe recordarse que la congelación produce expansión del volumen
de líquidos y tejidos, produciendo la rotura de envases de vidrio. En general se debe respetar
un volumen libre de al menos un tercio para dar lugar a la expansión del material. Estudios de
degradación de analitos mostraron que a estas temperaturas los tejidos y humores biológicos
sufren poca pérdida de los mismos por biotransformación. Sin embargo debe considerarse a
cada analito como particular en al ámbito biológico donde se halla.
Es necesario enviar la muestra lo antes posible al laboratorio, evitando interrumpir la
cadena de frío durante el traslado. Si deben recorrerse grandes distancias, pueden utilizarse
recipientes de telgopor con hielo en su interior o bien utilizar bidones refrigerantes, evitando el
contacto directo de los mismos con las muestras.
2.3.2 Sangre
Los recipientes para enviar muestras de sangre pueden ser frascos, preferiblemente
pequeños, con su respectiva tapa para lograr cierre hermético ó bien tubos de ensayo con
cierre perfecto. Debería agregarse en la mayoría de los casos, fluoruro de sodio como
preservador, aunque si es refrigerada y llevada rápidamente al laboratorio no es imprescindible.
Se necesitan como mínimo 10 ml para someter este fluido a estudio toxicológico general y 2 ml
para estudio de alcoholemia (esto si se cuenta con cromatógrafo gaseoso ó se aplica la técnica
de microdifusión).
Cuando se envasa sangre ó suero, no debe quedar espacio vacío en el recipiente, es
decir se debe evitar cámara de aire, que produce pérdidas importantes no sólo de etanol sino
de cualquier otro tóxico volátil. Para evitar esto, debe llenarse al ras, cubrir con tapa en forma
correctamente ajustada y si es posible, sellarse con precinto de aluminio (como los viales de
medicamentos inyectables).
Un procedimiento correcto en la toma de muestra consiste en no enjuagar con alcohol los
recipientes que se propone utilizar para colocar las muestras de sangre ó suero. Tampoco
debe utilizarse este solvente para desinfectar la piel del individuo al que se extrae muestra
hemática para análisis de alcoholemia.

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Es recomendable no solicitar frascos pequeños en Hospitales ó Unidades Sanitarias
debido a que muchas veces quedan restos de medicamentos que no se extraen con lavado
“casero”, provocando confusiones en el ulterior estudio analítico. En los casos de extracciones
a imputados de un ilícito, se recomienda la extracción de por lo menos dos muestras
sanguíneas consecutivas, con un intervalo de una hora entre ambas extracciones. Debe
anotarse la hora y rotularse claramente (esto resulta importante para determinación de
alcoholemia retrospectiva).
2.3.3 Orina
La toma de muestra de orina se realiza en forma similar a la recolección sanguínea,
obviamente colocada en recipientes de mayor capacidad. Debe enviarse como mínimo 10 ml,
pero es conveniente remitir toda la existente en vejiga en casos post-mortem o la emitida por
individuo vivo, durante 24 hs. Se debe rotular y cerrar perfectamente. Debe indicarse mes, día
y hora de emisión ó recolección y fecha y hora de una dada circunstancia por la que se le pide
la determinación (determinación de cocaína o metabolitos). No debe agregarse ninguna
sustancia como conservante y debe refrigerarse a 4°C.
2.3.4 Pelo
Para la recolección de las muestras pilosas debe cortarse en sector occipital (coronilla)
bien al ras del cuero cabelludo, en lo posible 1 ó 2 grs (en la práctica un puñado o mechón es
suficiente). Tomar el extremo cercano al cuero cabelludo y colocarlo sobre el papel ó cartón
para luego abrochar con aplique de broches de tamaño apropiado y colocar otro papel o cartón
encima del anterior. Luego, pegar o atar según corresponda siendo aconsejable resguardarlo
de la luz en papel de aluminio. El envoltorio debe permanecer firme y debe indicarse
claramente la zona cercana al cuero cabelludo y la distal.
Para el caso de requerir determinación de drogas en vello pubiano y axilar, este debe ser
cortado al ras de la piel y colocarlo en sobre de papel común. Si la muestra se toma de un
individuo fallecido es aconsejable arrancar el pelo para obtener el bulbo piloso mejorando las
posibilidades de detección retrospectiva de ingesta.
2.3.5 Restos óseos
Para realizar las determinaciones toxicológicas en restos óseos, las muestras deben
remitirse en cajas ó bolsas de cartón cerradas. Si las piezas óseas halladas estuvieran
húmedas, se deben dejar secar a la sombra y recién luego enviarlas en sobres de papel
cerrados.
Generalmente se utilizan huesos procedentes de la cresta ilíaca o bien huesos largos
como femur.
Investigaciones muy recientes han mostrado la importancia de este tejido en casos
postmortem (McGrath & Jenkins, 2004). Inclusive ciertas drogas que no fueron halladas en
sangre fueron detectadas en hueso (nortramadol, quinina, cocaetileno, además de otros
psicotrópicos).
2.3.6 Prendas para la investigación de pólvora
Tanto los residuos como las partículas de pólvora parcialmente quemadas, se
depositarán sobre una superficie en una disposición definida, dependiendo de la distancia que
existe entre el blanco y la boca del cañón. Cuando se trata de disparos de contacto deberán
examinarse todas las ropas que se hallan en el camino del proyectil.
Existen numerosos factores que afectan la retención de residuos sobre la prenda de
modo que el valor de prueba queda condicionado al seguimiento estricto de los pasos
detallados en el instructivo:
1. Las prendas de la víctima deben ser retiradas en forma lenta y por sectores. De no ser
posible, se sugiere cortar las mismas por zonas que no comprometan orificios y/o desgarros
que han de ser fundamentales para el análisis.

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2. Si existieran manchas de sangre húmeda deben secarse al aire ó con corriente tibia de aire y
flujo débil.
3. Las prendas deben colocarse una por una, en forma separada, entre dos planchas de cartón
perfectamente dispuestas, atadas con hilo, evitando roces ó corrimientos, principalmente en las
zonas donde hay presunción de existencia de residuos de fulminante ó esquirlas de bala.
Resulta importante asegurar el área a analizar.
2.3.7. Estudios inmunohematológicos
La toma de muestra para estudios inmunohematológicos tiene como objetivo la
identificación en cadáveres y/o individuos, de manchas de sangre y manchas de semen.
La recolección de muestras para la identificación de cadáveres y/o individuos puede
obtenerse en distintas circunstancias. Una de las posibilidades puede ser mediante el
procedimiento de autopsia (cadáveres), obteniendo una muestra sanguínea de
aproximadamente 15 ml por punción intracardíaca directa, utilizando aguja y jeringa
descartables (estériles y secas). Luego se envasa la muestra en tubo cónico, con tapa a rosca,
con sus respectivos rótulos y demás garantías de ley y se mantiene refrigerada entre 4 y 6ºC
(no debe congelarse).
En aquellos casos en los cuales sobre la misma muestra se solicita la determinación de
alcoholemia, el anticoagulante a emplear debe ser el fluoruro de sodio en una concentración de
15 mg/ml, debiéndose observar la misma norma que para el caso anterior y conservarla entre 4
- 6ºC.
2.3.8 Recolección de muestras para la identificación de manchas
biológicas
Un hecho fundamental en el análisis de este tipo de muestras lo constituye el proceso
de obtención y su posterior conservación. Una inadecuada recolección y/o mala preservación
puede alterar este tipo de evidencias, a tal punto que no sólo dificultarían sino que
directamente imposibilitarían este tipo de pericias ya que los elementos a evaluar son en
general sumamente lábiles.
2.3.8.a Manchas de sangre
En un principio, estas manchas poseen un color rojo brillante que paulatinamente
cambiará a una tonalidad pardo-rojiza. Para su levantamiento, un elemento a tener en cuenta
es el tipo de superficie sobre la cual se encuentra asentada.
Si el soporte no es absorbente, luego de una minuciosa descripción de la distribución,
posición y forma de las manchas (es de suma utilidad la obtención de fotografías), se puede
proceder a poner en contacto la mancha con una gasa apenas húmeda en solución fisiológica,
trasladándola posteriormente a un tubo cónico con tapa a rosca especialmente si la cantidad es
escasa ó eventualmente, a una cápsula de Petri, descartable. A continuación y en un lugar
adecuado, se dejará secar la gasa, pudiendo usarse un secador de cabello con aire frío. Luego
el material será rotulado, lacrado e individualizado de modo tal que pueda identificarse
claramente de dónde fue obtenida cada una de las muestras y cumpla con las garantías. Debe
conservarse seco en lugar refrigerado.
Si la superficie es absorbente, por ejemplo una alfombra, cortinas, colchones, etc, se
evaluará la conveniencia de proceder a cortar la mancha o bien el envío del material en
cuestión al laboratorio, siempre respetando, de ser necesario, las condiciones de secado
previamente citadas.
Si las manchas están asentadas sobre prendas, las mismas se dejarán secar en iguales
condiciones a las ya expuestas, extendiéndola sobre bastidores ó superficies adecuadas,
evitando el doblado, ya que podrían mancharse zonas que, en un principio, no lo estaban,
alterando así la evidencia original. Una vez seco, se debe envolver por separado, prenda por
prenda, en papel madera y proceder a continuación conforme a las garantías de ley.
Finalmente, cuando se trata de sangre no coagulada se pueden seguir dos
procedimientos. El primero de ellos consiste en tomar con una pipeta Pasteur ó bien con una
jeringa, un volumen determinado de sangre (3 ml) y colocarlos en un tubo de ensayo ó frasco

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conteniendo igual cantidad de solución fisiológica. La segunda posibilidad consiste en colocar
una tela de algodón ó papel de filtro de modo tal que absorba dicho fluido el cual sería secado
a continuación según las condiciones ya descriptas. En ésta operación el elemento absorbente
será sostenido con pinzas adecuadas para tal fin. Finalizadas las operaciones enunciadas
precedentemente, se procederá a rotular y lacrar el material obtenido. También puede
sugerirse la realización de extendidos sobre porta objetos de vidrio.
2.3.8.b Manchas de semen
El elemento de importancia es el espermatozoide y su observación en forma completa es
prueba irrefutable de la presencia de esperma. Dicha célula es muy lábil, siendo habitual que la
cabeza se separe de la cola, imposibilitando el diagnóstico. Es menester secar las prendas, ya
que la humedad afecta los espermatozoides. En caso de obtener hisopados deben colocarse
en tubos de ensayo ó cónicos con tapa a rosca (limpios, secos y estériles).
Realizar extendidos sobre porta objetos de vidrio, dejar secar y luego envolverlos con
papel, separando uno de otro y rotular para su posterior identificación, cumplimentando en
todos los casos las garantías de ley.
2.4 Recolección de muestras para análisis en química ambiental
A continuación se describen los procedimientos que deben seguirse para la correcta toma
de muestras de tipo ambiental (aguas, barros, sedimentos y efluentes industriales) donde se
excluyen las muestras de tipo aire dado la complejidad de las mismas en cuanto a
equipamiento, instrumental y variedad de posibilidades.
2.4.1 Muestreo, preservación y almacenamiento de muestras de agua
El correcto resultado de una determinación no depende tan sólo del análisis propiamente
dicho. Esto se logra asegurándose una buena recolección de la muestra y una eficaz
preservación hasta el momento de su análisis. Ciertos parámetros conviene determinarlos in
situ, por ejemplo: temperatura, gases disueltos, pH, cloro residual, turbidez y color. Es muy
importante que la muestra obtenida sea representativa del curso de agua a analizar.
En todos los casos, aunque los frascos estén perfectamente limpios, deben ser
enjuagados con la muestra 3 ó 4 veces.
Es de suma importancia que al entregar una muestra al laboratorio, el frasco esté bien
rotulado, consignando en él la fecha y hora del muestreo, la localización y el nombre del
operador. Es conveniente que la solicitud de análisis llegue al laboratorio acompañada de una
planilla donde se encuentren los datos obtenidos en campo.
2.4.2 Toma de muestras de aguas para examen bacteriológico
Una muestra mal extraída llevará a conclusiones erróneas en lo referente a la calidad del
agua que pretende representar.
Para el caso de muestras de agua obtenidas de grifo, debe elegirse aquel que esté
comunicado directamente a la cañería de distribución, es decir, que el ramal en que se
encuentre el grifo no debe estar conectado con tanques domiciliarios, filtros, ablandadores u
otros artefactos similares.
Los procedimientos que se realizan en la rutina de la toma de muestra de agua
comprenden:
 Limpiar la boca del grifo.
 Abrir el grifo totalmente y dejar fluir el agua durante 5 minutos.
 Cerrar el grifo.
 Esterilizar el grifo calentando la boca del mismo durante 2 minutos con llama de una
lámpara de alcohol ó con un hisopo de algodón embebido en alcohol.
 Abrir nuevamente el grifo y dejar fluir el agua durante 10 minutos.
 Destapar cuidadosamente el frasco evitando todo contacto de los dedos con la boca del
mismo y con la tapa.
 Llenar el frasco, colocar la tapa inmediatamente.
 Rotular y remitir refrigerado a 4ºC, de inmediato al Laboratorio.

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Para el caso de un grifo situado en la cañería de un pozo semisurgente, se debe abrir el
grifo y dejar fluir el agua durante 30 minutos (si se trata de un pozo de uso continuo) o durante
5 hs (si se trata de un pozo que se utiliza poco ó si está fuera de servicio). A continuación
proceder según la técnica detallada anteriormente.
2.4.3 Toma de muestras de aguas para examen físico-químico.
En este caso se debe tomar en cantidad suficiente (generalmente 1 litro) de muestra y
envasarla en un recipiente limpio. Los recipientes no deben necesariamente estar esterilizados.
Rotular y remitir al laboratorio.
2.4.4 Toma de Muestra de barros ó sedimentos.
En todos los casos deben tomarse los mismos en frascos de boca ancha, debidamente
identificados con rótulos a tal fin. Remitir al Laboratorio sin preservante de ningún tipo. La
cantidad a recoger será de unos 300 gr. Tomar la muestra con espátulas ó dispositivo ad-hoc.
2.4.5 Toma de muestra de efluentes industriales.
Debe tomarse la muestra a la salida del establecimiento en cantidad acorde a los
parámetros a medir y utilizar los envases según indicación del perito. Enjuagar varias veces el
recipiente con el líquido del efluente. Remitir la muestra al Laboratorio rotulada.
Bibliografía
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Laguens R. M. Editorial S.C.J.B.A, 2000.
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