Manejo-do-bicudo-do-algodoeiro.pdf

Circular
Técnica
140
ISSN 0100-6460
Campina Grande, PB
Dezembro, 2016
Autores
José Ednilson Miranda
Engenheiro-agrônomo, D.Sc em
Entomologia Agrícola, Embrapa
Algodão, Núcleo de Pesquisa do
Cerrado, Rod. GO-462, km 12,
75375-000, Santo Antônio de Goiás,
GO.
Sandra Maria Morais Rodrigues
Engenheira-Agrônoma, DSc. em
Entomologia Agrícola, Embrapa
Algodão, Núcleo de Pesquisa do
Cerrado, Rodovia MT-222, Km 2,5,
s/n - Zona Rural, CEP 78550-970,
Sinop, MT.
Manejo do Bicudo-do-algodoeiro em Áreas de
Agricultura Intensiva
Foto:
Jair
Heuert
A chegada do bicudo no
Brasil
Em fevereiro de 1983, a presença
do bicudo foi constatada em
áreas de cultivo de algodoeiro
próximo a Campinas-SP, sendo
comunicada oficialmente pela
Escola Superior de Agricultura
Luiz de Queiróz, de Piracicaba
(BARBOSA et al., 1986;
NAKANO, 1983). A origem
desses insetos introduzidos no
Brasil é incerta. Na literatura há referências à possível migração proveniente de
áreas de produção do sudeste dos Estados Unidos, nordeste do México, Haiti,
República Dominicana, Venezuela ou Colômbia (DEGRANDE, 1991; SANTOS,
1989). A hipótese mais aceita é a de que os insetos tenham sua origem no
sudeste dos Estados Unidos e sua introdução no Brasil tenha acontecido de forma
acidental ou intencional por via aérea, uma vez que os primeiros focos detectados
se situavam nas proximidades do Aeroporto Viracopos em Campinas (NAKANO,
1983). Essa hipótese foi reforçada por Confalonieri et al. (2000) após a análise
do DNA mitocondrial de indivíduos provenientes de populações estabelecidas no
Brasil.
Imediatamente após a detecção do bicudo, entomologistas foram consultados
para que as primeiras providências fossem tomadas. Especialistas da Embrapa,
em rápida resposta, elaboraram um relatório técnico confirmando a presença da
praga em uma área de 15.000 hectares, distribuídas em sete municípios paulistas
(BARBOSA et al., 1986; BRAGA SOBRINHO; LUKEFAHR, 1983). Mesmo
que a dispersão de uma praga exótica tenha sido um processo rápido, o seu
estabelecimento em área tão extensa sugeria que sua introdução não era recente.
De qualquer forma, a constatação oficial exigia ações emergenciais para conter a
expansão da população do bicudo pelas áreas produtoras do Brasil. Estas ações
não aconteceram, apesar dos esforços da Embrapa, do Ministério da Agricultura
e da Secretaria da Defesa Sanitária Vegetal de São Paulo (CRUZ, 1987, 1990).
Todas as iniciativas foram inférteis, pois uma série de liminares, impetradas por
cotonicultores, ecologistas e outros, impediram sua efetiva adoção (MARTIN et
al., 1987; SILVA NETO, 1987).
Apenas quatro meses depois de ter sido detectado em São Paulo, a presença da
praga foi também confirmada nos Estados da Paraíba e Pernambuco, em áreas
de cultivo de algodão. Após análise de especialistas da Texas A & M University,
concluiu-se que eram insetos de mesma origem. Há duas hipóteses para estas
constatações sequenciais: a primeira considera que os insetos detectados no
Nordeste teriam sido transportados em caroços produzidos em São Paulo e
que foram semeados para cultivo nas áreas nordestinas (BASTOS et al., 2005;
BRAGA SOBRINHO; LUKEFAHR, 1983); a outra hipótese considera que as
ocorrências dos insetos em alta densidade populacional em áreas distantes

2 Manejo do Bicudo-do-algodoeiro em Áreas de Agricultura Intensiva
mais de 2.000 km de São Paulo (em linha
reta) indicam a ocorrência de duas introduções
(AZAMBUJA; DEGRANDE, 2014; DEGRANDE,
2006). O plano de controle e erradicação da
praga, delineado pelos especialistas na época,
não pôde ser adotado naquela região, pois proibir
o cultivo do algodão seria impossível. Mesmo
com o estabelecimento de sanções penais para
quem não eliminasse os restos culturais do
algodoeiro, o problema persistiu, favorecendo a
manutenção de altas populações da praga (SILVA
NETO, 1987). A ausência de medidas efetivas de
controle e erradicação fizeram com que o bicudo
se transformasse no maior problema fitossanitário
da cultura do algodoeiro no Brasil. Hoje o bicudo
está presente em todos os estados brasileiros que
cultivam o algodão, exceto no Estado de Roraima,
onde ainda não foi constatado.
A introdução do bicudo do algodoeiro foi o divisor
de águas da cotonicultura nacional. A experiência
obtida desde então, passados 33 anos (1983-
2016), indica que o bicudo pode ser classificado
como uma das pragas mais danosas da nossa
agricultura. Assim, são fatores que contribuem
para a sua manutenção em campos brasileiros às
grandes áreas cultivadas com o algodoeiro, o clima
extremamente favorável ao desenvolvimento das
populações do bicudo e a ausência de inimigos
naturais eficientes para regular tais populações.
Por esta razão, por se tratar de praga presente
na maioria das lavouras do país, ações isoladas,
desordenadas ou de alcance limitado não são
suficientes para reduzir efetivamente suas
populações. Por isso, costuma-se dizer que o
bicudo não respeita porteiras, e mesmo que quase
todos os produtores de uma determinada região
tomem medidas corretas e em tempo hábil para
reduzir os níveis populacionais do inseto em suas
áreas, basta que somente um deles não faça o
dever de casa e o inseto se multiplicará e causará
prejuízos significativos a todos.
Aspectos bioecológicos do bicudo
A fase larval do bicudo ocorre dentro das estruturas
de frutificação de plantas hospedeiras. Isto lhe
confere proteção de inúmeros inimigos naturais,
das condições adversas do meio ambiente e da
ação dos inseticidas (BUSOLI et al., 1994).
Os adultos são pequenos besouros com 4 a 9 mm
de comprimento, apresentam coloração castanha
quando recém emergidos e cinza quando se
tornam mais velhos, possuem dois espinhos em
cada fêmur do primeiro par de pernas e élitros com
riscas longitudinais (GALLO et al., 2002; GONDIN
et al., 1999).
A sua reprodução é sexuada e uma fêmea
oviposita em média 10 a 12 ovos por dia, ao longo
de 12 a 15 dias, resultando em cerca de 150
ovos durante toda a fase reprodutiva (RAMALHO;
WANDERLEY, 1996; YOUNG JUNIOR, 1969). A
oviposição é feita na base e na parte apical do
botão floral. A fêmea coloca um ovo por orifício,
sendo este posteriormente fechado por uma
substância cerosa que serve de proteção contra
os inimigos naturais e evita a desidratação do
ovo (GALLO et al., 2002; SILVIE et al., 2001).
No fim do ciclo do algodoeiro, a fêmea pode
fazer posturas nas maçãs imaturas (SILVIE et al.,
2001). O período embrionário varia de 2 a 4 dias,
o período larval de 3 a 4 dias e o período pupal de
3 a 5 dias; com longevidade média para machos
e fêmeas de 42 e 37 dias, respectivamente
(ALVAREZ, 1990).
Os botões florais preferidos para alimentação
são aqueles localizados no terço médio e para
oviposição os presentes no terço superior do
algodoeiro (GRIGOLLI et al., 2015). O bicudo é
incapaz de discriminar botões florais previamente
ovipositados, podendo colocar até cinco ovos por
botão floral, quando a infestação é superior a 50%
(SOARES; YAMAMOTO, 1993).
Os orifícios de alimentação são mais largos e
profundos que os de oviposição e geralmente
contêm à sua volta um anel amarelado formado
por grãos de pólen (RAMIRO et al., 1992; SILVA
et al., 1995). Após o ataque, os botões tornam-se
amarelos, as brácteas abrem-se e os botões caem.
Os botões atacados apresentam perfurações
externas, ficam com as brácteas abertas e pode-
se notar a presença de excremento amarelado.
As flores atacadas ficam com o aspecto de balão,
devido a abertura anormal das pétalas. As maçãs
apresentam perfurações externas, que são os
orifícios de alimentação e oviposição do inseto,
sendo que as fibras e sementes são destruídas
pelas larvas (GALLO et al., 2002).
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e veja imagens do bicudo nas
estruturas reprodutivas do
algodoeiro.
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e veja imagens do bicudo se
alimentando do algodoeiro.

3
Manejo do Bicudo-do-algodoeiro em Áreas de Agricultura Intensiva
O bicudo prefere se alimentar de grãos de pólen de
malváceas do gênero Gossypium. Para sobreviver
à ausência desse alimento durante a entressafra,
o inseto desenvolveu uma estratégia que consiste
em diminuir a atividade respiratória e aumentar
suas reservas, quando percebe que há menor
disponibilidade de botões florais. Com o fim do
ciclo da cultura, o bicudo abandona a lavoura e se
dispersa para áreas de refúgio, que lhe servirão de
abrigo durante a entressafra. Nesses ambientes os
insetos têm maior chance de sobrevivência caso se
alimentem de grãos de pólen de plantas presentes
no ambiente do Cerrado (ARELLANO, 1995).
As famílias Acanthaceae, Amaranthaceae,
Anacardiaceae, Arecaceae, Asteraceae,
Caesalpiniaceae, Fabaceae, Malphigiaceae,
Malvaceae, Meslastomataceae, Myrtaceae,
Myrtaceae, Plantaginaceae, Proteaceae, Rubiaceae,
Scheuchzeriaceae e Smilacaceae (Tabela 1) são
fornecedoras de pólen para os adultos do bicudo
(CUADRADO, 2002; GABRIEL, 2002; HARDEE et
al., 1999; LUKEFAHR et al., 1986; MACÊDO et al.,
2015; RIBEIRO et al., 2010).
Dentro da família Malvaceae as espécies
Cienfuegosia affinis, C. glabrifolia e C. drummondii
são consideradas hospedeiras em potencial, pois
o bicudo se desenvolve bem nos botões florais.
Além dessas espécies, Thespesia populnea e
Hibiscus sp. são também hospedeiras alternativas
do bicudo (LUKEFAHR et al., 1986). Ribeiro et al.
(2010), avaliando os recursos alimentares usados
pelo bicudo em plantios de algodão próximo a
áreas de cerrado e mata de galeria, no Distrito
Federal, constataram que esse inseto se alimentou
de 19 famílias na safra e entressafra. Plantas da
família Smilacaceae, com destaque para o gênero
Smilax são as mais utilizadas, principalmente, na
entressafra, seguida de representantes das famílias
Proteaceae, Melastomataceae-Combretaceae
e Myrtaceae. As plantas de Smilacaceae se
desenvolvem em áreas de cerrado natural, mas
ocorrem também em áreas degradadas.
No Estado da Bahia, em áreas cultivadas com
algodão inseridas nos biomas caatinga e cerrado,
Macêdo et al. (2015) estudaram quais os recursos
alimentares eram utilizados pelo bicudo na safra e
entressafra de algodão. Os autores constataram
que o bicudo se alimentou de grãos de pólen
de 17 famílias presentes na caatinga, sendo
as famílias Fabaceae e Myrtaceae comuns aos
biomas caatinga e cerrado.
Não existe comprovação científica de que o
bicudo consiga se reproduzir quando alimentado
com plantas hospedeiras que não o algodoeiro.
A especialização e co-evolução do bicudo
com plantas de algodoeiro é tanta que mesmo
quando se alimenta de plantas da mesma família
do algodoeiro o inseto não se reproduz. Em
experimento conduzido justamente para elucidar
esta questão, Gabriel (2002) inspecionou a
oviposição deste inseto em oito espécies de
plantas da família Malvácea das quais o inseto
se alimenta (Tabela 1) e concluiu que essas
malváceas não são hospedeiras reprodutivas do
bicudo-do-algodoeiro.
A cada nova safra de algodão, os bicudos
sobreviventes da entressafra são atraídos e
direcionam-se para as bordaduras da lavoura
algodoeira, passando a alimentar-se das partes
vegetativas até o surgimento dos primeiros botões
florais que estimulam a movimentação do inseto
pela área cultivada (SANTOS, 1999). As fêmeas
que saem do refúgio são atraídas pelos feromônios
dos machos e acasalam. Após a cópula, as fêmeas
se alimentam, por aproximadamente três a cinco
dias com pólen, antes de iniciarem a oviposição,
pois precisam desse substrato para produzirem seus
ovos (LEGGETT, 1986). De acordo com Barbosa et
al. (1986), se 50 bicudos entram em quiescência,
é possível chegar a uma população de 500.000
adultos ao final da próxima safra, caso nenhum
controle seja adotado. Dada a facilidade de encontrar
alimento nas áreas de cerrado ou caatinga durante a
entressafra, é preciso que o produtor tome medidas
enérgicas e eficientes de controle ao longo de todo
o ciclo da cultura, bem como destrua de modo
adequado os restos culturais.
Custo de controle do bicudo
no Cerrado brasileiro e perdas
decorrentes das infestações
Grandes esforços têm sido empreendidos pelo
setor produtivo do algodão no sentido de reduzir
o impacto ocasionado pelo bicudo nas lavouras
brasileiras. O alto poder destrutivo do bicudo
implica na necessidade de tomada de medidas
enérgicas e ordenadas, bem planejadas e
adequadamente executadas. Ajustes e correções
de estratégias devem ser efetuados no momento
certo. A organização do setor algodoeiro, deve
refletir nas ações de controle do bicudo no Brasil.
Um levantamento da situação de pragas na cultura
do algodoeiro foi efetuado nas regiões produtoras
do Brasil, abrangendo nove estados. Informações
foram coletadas com 32 grupos empresariais e 54
consultores para servir de diagnóstico do impacto
de pragas e seu controle no cenário agrícola de

Família Gênero/Espécie Nome comum Fonte
Acanthaceae Ruellia - Ribeiro et al. (2010)
Amaranthacea Froelichia - Macêdo et al. (2015)
Anacardiaceae Spondia tuberosa Umbuzeiro Macêdo et al. (2015)
Anacardiaceae Schinus terebinthifolius Aroeira-vermelha Macêdo et al. (2015)
Arecaceae Syagrus - Macêdo et al. (2015)
Asteraceae Mykania - Macêdo et al. (2015)
Caesalpiniaceae Chamaecrista - Macêdo et al. (2015)
Fabaceae Mimosa arenosa Jurema-branca Macêdo et al. (2015)
Fabaceae M. caesalpinifolia Sabiá Macêdo et al. (2015)
Fabaceae M. sensitiva Malícia Macêdo et al. (2015)
Fabaceae M. tenuiflora Jurema-preta Macêdo et al. (2015)
Fabaceae Piptadenia stipulacea Jurema-branca Macêdo et al. (2015)
Fabaceae Plathymenia reticulata Paricazinho Macêdo et al. (2015)
Malphigiaceae Byrsonima - Macêdo et al. (2015)
Malvaceae Abelmoschus esculentus Quiabo Gabriel (2002)
Malvaceae Cienfuegosia affinis Algodão-do-Pará Lukefahr et al. (1986)
Malvaceae C. drummondii - Lukefahr et al. (1986)
Malvaceae C. glabriflora - Lukefahr et al. (1986)
Malvaceae C. heterophylla - Lukefahr et al. (1986)
Malvaceae
Hibiscus pernambucen-
cis
Algodão-do-brejo Lukefahr et al. (1986)
Malvaceae Hibiscus rosa-sinensis Mimo-de-vênus Gabriel (2002)
Malvaceae Hibiscus sabdariffa Vinagreira Gabriel (2002)
Malvaceae Hibiscus schizopetalus Hibisco-crespo Gabriel (2002)
Malvaceae Hibiscus syriacus Rosa-de-Sarom Gabriel (2002)
Malvaceae Hibiscus tiliaceus Algodoeiro-da-praia Gabriel (2002)
Malvaceae Malvaviscus arboreus Hibisco-colibri Gabriel (2002)
Malvaceae Thesphesia populnea Algodão-bravo ou algodão-do-campo Lukefahr et al. (1986)
Meslastomataceae Miconia - Macêdo et al. (2015)
Meslastomataceae Schwackea - Macêdo et al. (2015)
Meslastomataceae Tibouchina - Macêdo et al. (2015)
Myrtaceae Myrcia - Macêdo et al. (2015)
Myrtaceae Eucalyptus - Macêdo et al. (2015)
Plantaginaceae Angelonia - Macêdo et al. (2015)
Proteaceae Roupala montana Cajueiro-bravo-da-serra Ribeiro et al. (2010)
Rubiaceae Borreria - Macêdo et al. (2015)
Rubiaceae Richardia scabra Poaia-do-cerrado Macêdo et al. (2015)
Scheuchzeriaceae Scheuchzeria - Ribeiro et al. (2010)
Smilacaceae Smilax - Ribeiro et al. (2010)
Tabela 1. Famílias, gêneros, espécies e nomes comuns de plantas fornecedoras de grãos de pólen como alimento
para Anthonomus grandis.
produção do algodão no Brasil (BELOT et al., 2016).
Neste levantamento, observou-se que o número de
aplicações de inseticidas para controle do bicudo-
do-algodoeiro no Cerrado brasileiro variou de 17 a
23 por safra (Figura 1). Este número é em função
do manejo realizado, da pressão populacional na
safra atual, da intensidade de ocorrência de plantas
voluntárias (tiguera), restos culturais (soqueiras) e
das condições edafoclimáticas.
Com os dados deste trabalho, foram elaborados
comparativos do custo de controle de pragas,
da ordem de importância destas pragas e do
número de pulverizações requeridas para seu
controle em cada região. Perda média de 11% da
produção foi ocasionada pelo ataque das diversas
espécies-pragas na cultura. O custo de controle
de pragas se situou em cerca de US$ 500,00 por
hectare na safra 2012/2013, contra US$ 400,00

5
Figura 1. Número médio de aplicações de inseticidas para o controle
de pragas no algodoeiro, inclusive o bicudo.
Fonte: Belot et al. (2016).
na safra 2011/2012, significando aumento de
25%. Deste custo, na safra 2012/2013, 29%
foi relacionado às ações de controle contra o
bicudo, perdendo apenas para os gastos feitos
para controlar lagartas, devido aos grandes
esforços empregados para controlar a então recém-
detectada Helicoverpa armigera (Lepidoptera:
Noctuidae). Na safra seguinte, o percentual subiu
para 35%, praticamente metade dos gastos de
controle de pragas sendo direcionado para o
controle do bicudo. Considerando-se a área total de
abrangência das lavouras de algodão no Brasil, o
ranqueamento das pragas em ordem de importância
naquele período destacava a lagarta H. armigera e o
bicudo nas primeiras posições, seguidos por outras
pragas polífagas do sistema, como falsa-medideira,
pulgão, ácaros, percevejos e mosca-branca.
O número de pulverizações na cultura do
algodoeiro aumentou significativamente entre
2012 e 2013, cerca de 10 a 15%, e isto esteve
ligado diretamente aos ataques da lagarta da
espécie H. armigera e às dificuldades de controle
do bicudo (Tabela 2). Entretanto, o custo com
o controle do bicudo foi se elevando, enquanto
o custo para controlar a lagarta Helicoverpa foi
sendo reduzido, devido às menores infestações
verificadas nas safras seguintes, cujas causas
podem ser relacionadas ao uso cada vez mais
intenso de cultivares de algodoeiro transgênicas
com a tecnologia Bt que apresenta resistência
às lagartas. Para controlar o bicudo, cerca de
US$ 180,00 foram gastos para cada hectare
cultivado com algodão em 2012/2013 (Tabela 2),
correspondendo, em média, 17 pulverizações.
Estes números, transpostos para a área total de
produção de algodão naquela safra (cerca de
1.100.000 hectares) constituíram valores situados
próximos a US$ 200 milhões. Na safra seguinte,
o número médio de pulverizações subiu para 20.
Considerando-se a área de 1.120.000 hectares
plantadas em 2013/2014 e valores médios de
US$ 189 gastos com o bicudo por hectare, chega-
se a valores brutos de cerca de US$ 210 milhões
por ano (BELOT et al., 2016).
Levantamento mais recente realizado em março
de 2016 pela equipe do Instituto Mato-grossense
do Algodão (BELOT et al., 2016) sobre custos
Tabela 2. Número de pulverizações e porcentagem do custo com controle das pragas (por grupos) na cultura do
algodoeiro. Safras 2012/2013 e 2013/2014.
* As pulverizações não são cumulativas, pois costumam ser feitas para mais de um alvo.
Praga
Número de pulverizações* % do custo de controle de pragas
2012/2013 2013/2014 2012/2013 2013/2014
Lagartas 11 4 45,0 7,0
Bicudo 17 20 29,3 35,0
Pulgões/mosca branca 12 10 10,8 24,0
Ácaros 2 4 5,2 22,0
Percevejos 3 3,5 5,2 11,0
Outros 3 3 4,5 1,0

de produção de algodão nas diferentes regiões
produtoras do Brasil e perdas ocasionadas pelo
bicudo-do-algodoeiro estimou o custo médio de
produção de um hectare em US$ 2.176,00. Este
valor variou de US$ 1.700,00 a US$ 2.700,00, em
função da tecnologia adotada, manejo de pragas
e doenças, controle intensivo do bicudo e adoção
de plantio em primeira ou segunda safra. Um dos
pontos que tem contribuído para a elevação nos
custos relaciona-se com a maior ou menor adoção
das medidas de manejo do bicudo. Somente com
os custos para o controle do bicudo (custo de
inseticidas e aplicações), os produtores estão
gastando em média US$ 192,25 por hectare, o
que representa 9% do gasto total de produção. O
número médio de pulverizações para o controle do
bicudo em Mato Grosso gira em torno de 15, mas
casos de mais de 20 aplicações são comuns.
Além das aplicações de inseticidas, que são ações
emergenciais, ainda se tem os gastos com medidas
preventivas, que envolvem destruição de restos
culturais, controle de plantas tigueras, inclusão de
inseticidas em desfolha e/ou dessecação, instalação
de dispositivos de monitoramento (armadilhas) e
dispositivos atrai-e-mata (tubo mata-bicudo), entre
outras. O custo médio dessas medidas tem girado
em torno de US$ 68,15 por hectare, podendo
variar muito em função da adoção total ou parcial
em cada propriedade.
Apesar do oneroso manejo adotado pelos produtores,
estima-se ainda uma perda de 5,7 arrobas (@) por
hectare ocasionada pelo bicudo, podendo variar de
3 a 15 arrobas. Se adicionarmos às perdas médias
decorrentes do ataque do bicudo os gastos com
o seu controle, o valor médio de US$ 375,00 por
hectare por ano é atingido (Tabela 3). Desta forma,
somente no Estado do Mato Grosso, maior produtor
de algodão do Brasil, com área cultivada estimada
de 586 mil hectares (safra 2015/2016), as perdas e
gastos com o bicudo chegam a cerca de US$ 220
Parâmetros
Valores médios/ha
(mínimoe máximo)
1 Custo de produção de algodão US$ 2.176,00 (1.700,00 – 2.700,00)
2 Custo com controle químico do bicudo-do-algodoeiro US$ 192,25 (150,00 – 244,20)
3 Custo com medidas complementares de controle do bicudo-do-algodoeiro2
US$ 68,15 (50,00 – 107,70)
4 Perdas estimadas ocasionadas pelo bicudo-do-algodoeiro3
5,7 @ de pluma (3 – 15)
5 Custos de controle e perdas envolvendo o bicudo-do-algodoeiro (itens 2+3+4) US$ 375,00
Tabela 3. Custo de produção de algodão, custos com controle do bicudo e perdas ocasionadas pelo inseto1
.
1
Incluindo destruição de restos culturais, eliminação de plantas tigueras, inclusão de inseticidas em desfolha e/ou dessecação, instalação de Tubo
Mata Bicudo, armadilhas etc.
2
Destruição de restos culturais e plantas voluntárias de algodoeiro, instalação de TMB e uso de inseticidas na desfolha.
3
As perdas ocasionadas pelo bicudo foram calculadas considerando o valor médio da arroba de pluma de R$76,00 (Fonte: Instituto Mato-grossense
de Economia Aplicada – IMEA, em 08/03/2016), transformado em dólar, considerando a cotação US$ 1,00 = R$ 3,78.
milhões por ano. Estendendo os cálculos para a área
total cultivada no Brasil, de 960 mil hectares (safra
2015/2016), as perdas e gastos com essa praga são
estimados em torno de US$ 360 milhões por ano.
Táticas de convivência com o
bicudo
Semeadura do algodoeiro em período
definido e concentrado
A época de semeadura das áreas de algodão é
regulamentada por portarias dos órgãos estaduais
de defesa sanitária vegetal. Cada região produtora
tem calendários de semeadura e colheita
específicos, estabelecidos de acordo com as
características regionais relacionadas ao clima,
sistemas de produção, entre outros.
Mato Grosso está dividido nas regiões I (sul e
centro) e II (norte), cujas datas de plantio são de 1
de dezembro a 28 de fevereiro e 15 de dezembro
a 28 de fevereiro, respectivamente (MATO
GROSSO, 2016). Em Goiás, há atualmente cinco
regiões estabelecidas com diferentes períodos
de semeadura, que variam de 26 de novembro
a 15 de março considerando-se o todo o estado
(Tabela 4). Uma vez que cada região está distante
ao menos 40 km em linha reta das outras, tal
isolamento permite as subdivisões. Na Bahia,
o plantio do algodão em condições de sequeiro
começa na segunda quinzena de novembro e
termina no dia 5 de janeiro; já o algodão irrigado
pode ser plantado da segunda quinzena de
novembro até o dia 15 de fevereiro.
Controle químico do bicudo
O controle químico do bicudo em associação com
o controle cultural é uma importante estratégia
de controle do inseto, mas não pode ser utilizada
isoladamente. Tão impactante quanto a eficiência
biológica do inseticida utilizado para o controle do

7
bicudo, a tecnologia de aplicação desse inseticida
pode comprometer o sucesso do controle quando
não utilizada a contento. Aplicações de inseticidas
recomendados contra o bicudo em formulações,
doses ou técnicas inadequadas costumam não
atingir o alvo e são ineficientes.
O controle químico só deve ser adotado quando
o nível de controle para a praga for atingido.
No Cerrado é adotado o número de 5% de
estruturas florais com presença do inseto adulto
ou com danos do inseto. Aplicações excessivas
de inseticidas podem favorecer a seleção de
insetos resistentes e resultar no aumento da
população da praga. Para controlar o bicudo-do-
algodoeiro existem diversos produtos registrados,
de diferentes grupos químicos e modo de ação
(Tabela 5). É de fundamental importância a adoção
de esquema de rotação dos produtos por modo de
ação, estratégia usada para retardar ou evitar o
surgimento da resistência da praga.
Controle químico localizado de populações
migrantes do bicudo
Bicudos sobreviventes de uma safra permanecem
em quiescência (estado de baixo metabolismo)
durante a entressafra, abrigado nos refúgios
de vegetação natural do Cerrado. Quando a
nova safra de algodão é instalada, estes insetos
remanescentes voltam à lavoura, atraídos pelos
semioquímicos emitidos pelas plantas, se alimentam
dos botões florais recém produzidos e as fêmeas
adultas efetuam a oviposição. Sabendo-se disso,
o controle localizado de populações migrantes do
refúgio para as lavouras através de pulverizações
sistematizadas de inseticida no perímetro das
lavouras (aplicações de bordadura) é prática
eficiente no controle populacional. O controle dos
indivíduos provenientes dos locais de refúgio visa
eliminar esses adultos logo na entrada da lavoura,
impedindo sua instalação na lavoura e a oviposição
nas estruturas florais, evitando assim o nascimento
de novos indivíduos na lavoura e mantendo as
populações de bicudos abaixo do nível de dano
Região * Período de semeadura
Acreúna, Ipameri, Itumbiara, Palmeiras de Goiás, Caiapônia** 26 de novembro a 10 de fevereiro
Chapadão do Céu, Mineiros***, Montividiu, Caiapônia**** 01 de dezembro a 05 de fevereiro
Perolândia, Portelândia e Mineiros***** 05 de dezembro a 15 de fevereiro
Cocalzinho de Goiás, Cristalina, Formosa, Silvânia e Minaçu. 11 de novembro a 30 de janeiro
Jussara, Matrinchã, Montes Claros de Goiás e São Miguel do Araguaia 21 de janeiro a 15 de março
*A relação completa dos municípios se encontra em GOIÁS, 2014; **Abaixo de 600 metros de altitude; ***Porção limítrofe a Chapadão do Céu
****Acima de 600 metros de altitude; *****Exceto porção limítrofe a Chapadão do Céu.
Fonte: Goiás (2014).
Tabela 4. Período de semeadura do algodoeiro nas diferentes regiões no estado de Goiás.
econômico. Para isso, a partir da fase fenológica
V3 (plantas com três folhas verdadeiras) até a fase
fenológica C (ocorrência da primeira maçã firme),
as aplicações localizadas de inseticidas em faixa de
30 a 50 metros ao longo do perímetro das lavouras
de algodão é uma prática que deve ser estimulada,
pois reduz consideravelmente as populações de
bicudos. Esta medida funciona como barreira
química e permite o controle de populações recém-
chegadas e não detectadas pelas armadilhas ou nas
amostragens visuais.
Como rota desta migração, o perímetro da
lavoura pode servir como escala para o inseto.
Os insetos sobreviventes ao final da safra, cujo
deslocamento em voo é de pequenas distâncias,
se deslocam para as áreas de refúgio, passando
necessariamente pelo perímetro da lavoura,
aproveitando os últimos recursos alimentares
disponíveis. É importante salientar que talhões
de outras culturas que tem plantas de algodão
(rebrota da soqueira e/ou tigueras) na entressafra,
facilitam a sobrevivência do bicudo e por isso
essas plantas devem ser eliminadas.
Em estudo desenvolvido por Miranda et al.
(2016) para avaliar o comportamento do bicudo
na periferia e dentro da lavoura de algodão,
foi verificado que as plantas produziram maior
número de estruturas florais na periferia do que
no interior da lavoura, provavelmente devido à
menor competição por luz e água que aquelas
situadas no interior da lavoura. Assim, as plantas
de periferia de lavoura se destacam e atraem mais
bicudos que as plantas adjacentes ou do interior
do talhão (Figura 2). Este trabalho foi executado
no final da safra, mas na literatura há relatos de
que também no início do florescimento das plantas
de algodoeiro, bicudos sobreviventes ocorrem
em maior número nas bordaduras, a fim de se
alimentar e efetuar a oviposição nos botões florais
(SANTOS, 1999; WHITE; RUMMEL, 1978).
Esta informação reforça a importância do controle
localizado de bicudo nos perímetros da lavoura, as

Modo de ação Grupo químico Princípio ativo Nome comercial
Agonista da acetilcolina Neonicotinóide Tiametoxam Adage 700 WS, Cruiser 700 WS
Antagonista de canais
de cloro mediados pelo
GABA
Fenilpirazol Etiprole Curbix 200 SC
Pirazol Fipronil Fipronil Nortox 800 WG, Klap, Singular BR
Bloqueador seletivo de
alimentação
Piridina azometina Pimetrozina Chess 500 WG
Inibidor da enzima
acetilcolinesterase
Carbamato
Carbosulfano Marshal Star
Metanol + metomil Bazuka 216 SL, Exito 215 SK, Methomex 215 SL, Rotashock
Organofosforado
Fenitrotion Sumithion UBV, Sumithion 500 EC
Malation Malation 1000 EC, Malation Prentiss, Malathion UL Cheminova
Metidation Suprathion 400 EC
Modulador dos canais de
sódio
Piretróide
Alfa-cipermetrina Fastac 100 SC
Beta-ciflutrina Bulldock 125 SC
Beta-cipermetrina Akito, Optix
Bifentrina
Bistar 100 EC, Brigade 100 EC, Capture 100 EC, Capture
400 EC, Talstar 100 EC
Cipermetrina
Arrivo 200 EC, BritBR, Cipermetrin 250 EC CCAB,
Cipermetrina Nortox 250 EC, Cipermetrina 200 EC,
Cipermetrina 250 EC CCAB, Cipermetrina 250 EC DAV,
Cipertrin, Commanche 200 EC, Cyptrin Prime, Cyptrin 250
EC, Galgotrin
Deltametrina Decis Ultra 100 EC, Decis 200 SC, Decis 25 EC
Esfenvalerato Sumidan 150 SC, Sumidan 25 EC
Etofenproxi Safety, Trebon 100 SC
Fenpropatrina Danimen 300 EC, Meotrin 300, Sumirody 300
Gama-cialotrina Fentrol, Nexide, Stallion 150 CS, Stallion 60 CS
Lambda-cialotrina
Ares 250 CS, Brasão, Judoka, Kaiso Sorbie BR, Kaiso 250
CS, Karate Zeon 250 Cs, Karate Zeon 50 CS, Lambda
Cialotrina CCAB 50 EC, Lecar, Toreg 50 EC, Trinca, Trinca
Caps
Zeta-cipermetrina Fury 180 EW, Fury 200 EW, Mustang 350 EC
Bifentrina +
Cipermetrina
Ametista
Bifentrina + Zeta-
cipermetrina
Hero
Agonista da acetilcolina +
Modulador de receptores
de rianodina
Neonicotinóide +
Diamida
Tiametoxam +
clorantra-niliprole
Voliam Flexi
Agonista da acetilcolina +
sódio
Neonicotinóide +
Piretróide
Tiametoxam +
Lambda-cialotrina
Engeo Pleno
Imidacloprido +
Beta-ciflutrina
Connect
Inibidor da enzima
acetilcolinesterase +
sódio
Carbamato +
Piretróide
Carbosulfano +
Bifentrina
Talisman
Organofosforado +
Piretróide
Fenitrotion +
Esfenvalerato
Pirephos EC
Profenofós +
Cipermetrina
Polytrin, Polytrin 400/40 CE
Malation + gama-
cialotrina
Gamation
sódio + Modulador de
receptores de rianodina
Piretróide +
Diamida
Lambda-cialotrina +
Clorantra-niliprole
Ampligo
Tabela 5. Produtos registrados para o controle do bicudo, Anthonomus grandis (Coleoptera: Curculionidae), em
lavouras de algodoeiro.

9
chamadas aplicações de bordadura. Tal controle
se baseia na formação de uma barreira química e,
como tal, somente terá a eficácia esperada se o
controle químico for feito com a devida frequência
(máximo de cinco dias de intervalo entre as
aplicações) e com produtos eficientes. Em Goiás,
duas áreas de produção em Luziânia e Turvelândia,
onde esta medida foi efetuada com rigor e em
conjunto com as demais medidas recomendadas
de MIP do inseto, conseguiram reduzir o número
de pulverizações para controle do bicudo de 18 e
23 (safra 2013/2014) para 5 e 6 aplicações(safra
2014/2015), respectivamente (Figura 3)
(MIRANDA et al., 2016).
Controle químico na fase B1 com base no
armadilhamento de entressafra
O histórico dos índices de infestação gerado pelo
armadilhamento é uma informação fundamental
para início das aplicações sequenciais na fase de
aparecimento do primeiro botão floral (fase B1).
As pulverizações deverão ser realizadas com base
nos resultados do armadilhamento de entressafra,
que resultam no grau de infestação (medido pelo
número de bicudos coletados por armadilha por
semana – BAS). Assim, capturas iguais ou maiores
que 2 BAS definem as zonas vermelhas, faixa de
captura entre 1 a 2 BAS correspondem as zonas
amarelas; e a captura de até 1 BAS define áreas
Figura 2. Concentração de recursos (estruturas florais) e bicudos
no perímetro de algodoeiro em final de safra. Santo Antonio de
Goiás, 2014/2015.
Figura 3. Número de pulverizações em área total para controle
de bicudo em duas propriedades de Goiás onde pulverizações de
bordadura foram feitas durante todo o período de florescimento do
algodoeiro. Goiás, 2014/2015.

azuis. A emissão do primeiro botão floral (fase
F1), coincide com o momento da movimentação
do inseto das áreas de refúgio para a lavoura. Três
pulverizações sequenciais com intervalos de cinco
dias entre si são efetuadas em zonas vermelhas;
duas pulverizações em zonas amarelas e uma
pulverização em zonas azuis.
Tomada de decisão de controle químico
com base no nível de controle
A detecção visual na lavoura de 5% de botões
florais com presença de bicudos adultos e/
ou sinais de ataque (postura ou alimentação)
provocados pelo inseto é parâmetro utilizado
para a tomada de decisão de controle químico no
decorrer da safra. Após a fase B1, é obrigatório
o monitoramento de pragas nos talhões, fazendo
o levantamento e detectando o nível de controle
do bicudo. A amostragem de 200 a 300 botões
por talhão deve ser efetuada e, sendo detectada
presença do inseto ou seu dano, opta-se por
pulverização na área total do talhão. Caso
contrário, efetua-se nova amostragem a cada
cinco dias na borda e no interior do talhão. As
decisões sobre novas intervenções químicas
dependerão dos resultados das amostragens
visuais. É importante manter o monitoramento e
aplicações quando necessárias, mesmo em fase
de final de ciclo do algodoeiro, visando evitar
multiplicações do bicudo nesta etapa da cultura.
Controle químico do bicudo na desfolha
do algodoeiro
Uma fragilidade dos programas de controle do
inseto está no abandono das ações de manejo no
final de cada safra de produção de algodão. Na
fase final do cultivo, ações importantes de redução
populacional ainda precisam ser executadas.
A falta do controle químico dos bicudos
remanescentes no final da safra, permite que
esses indivíduos, embora fragilizados pela menor
disponibilidade de alimentos e mais suscetíveis ao
controle químico, migrem para áreas de refúgio,
onde permanecerão a salvo e em quiescência
(atividade metabólica reduzida) até que novas
plantas de algodão floresçam na próxima safra.
Quando aplicações são feitas por ocasião da
desfolha e da destruição dos restos culturais
do algodoeiro (momentos de fragilidade do
inseto) há uma redução significativa do número
de indivíduos parentais da primeira geração
de bicudos da nova safra, ou seja, há um
retardamento no aparecimento de bicudo logo no
início do estabelecimento da lavoura. O oposto
ocorre quando não se fazem aplicações no final
de safra, pois a sobrevivência destes indivíduos
parentais até a safra seguinte implicará em surtos
precoces de bicudo na lavoura. A quantidade de
indivíduos parentais dependerá da maior ou menor
eficiência de controle do inseto obtida na lavoura
da safra anterior. Logo, se o controle efetuado foi
ineficiente, a safra seguinte terá altas populações
do inseto nas lavouras de algodão.
No momento do uso do desfolhante (quando 60%
das maçãs apresentarem-se abertas e as que ainda
não se abriram estiverem com mais de 25 dias) a
adição de um inseticida contribui para a redução
da população de bicudos. O desfolhamento reduz
o suprimento alimentar do bicudo (principalmente
no ponteiro) e antecipa a colheita. Os insetos que
permanecerem nas plantas desfolhadas entram
em contato com o inseticida aplicado e morrem,
reduzindo assim a população dos bicudos no
período de entressafra.
Colheita rápida do algodoeiro
O planejamento inadequado da capacidade
operacional das máquinas da fazenda comumente
leva a atrasos não somente no manejo direto
do inseto, mas também na colheita, fatos que
favorecem a manutenção do inseto na cultura e
sua multiplicação no ambiente agrícola.
Destruição dos restos culturais e plantas
voluntárias de algodoeiro na entressafra
A medida mais importante para a convivência
com o bicudo é manter a área sem plantas
de algodoeiro no período da entressafra a
fim de causar alta mortalidade nos bicudos
remanescentes da safra. No entanto, essa
estratégia pode ser totalmente comprometida
pela germinação de plantas tigueras na área em
que se cultivou o algodão, na beira das rodovias e
estradas vicinais por onde transitam os caminhões
transportando o algodão colhido e, ainda, em áreas
de confinamento de gado em que se utiliza caroço
de algodão. Assim, a destruição completa dos
restos culturais continua sendo uma medida de
extrema importância para a redução da população
de bicudos, uma vez que a presença de poucas
plantas de algodoeiro na entressafra pode significar
a manutenção de indivíduos parentais de bicudo,
Baixe no seu celular um
leitor de QR Code. Fotografe
o código ao lado com o
aplicativo e veja como é feita
a amostragem do bicudo do
algodoeiro.

11
cujas fêmeas irão infestar os primeiros botões
florais da cultura implantada na safra seguinte.
A presença de restos culturais com rebrotas e
tigueras de algodoeiro no período de entressafra
pode ser considerada como o principal fator
que permite a elevação populacional do bicudo.
Desta forma, a destruição dos restos culturais
após a colheita deve ser priorizada, por meio
de roçagem e posterior eliminação da soqueira
de forma química (herbicidas) e/ou mecânica
(uso de destruidores de restos culturais). A
eliminação de plantas tigueras de algodoeiro no
meio da soja, milho ou áreas de pousio também é
necessária. Estas ações reduzem as chances do
bicudo se manter no período de entressafra e da
multiplicação da praga neste período, resultando
em menores populações na safra seguinte.
Diversos trabalhos já foram executados visando
verificar a eficiência dos métodos de controle
mecânico e químico na destruição de restos
culturais. Sofiatti et al. (2015) avaliaram diferentes
equipamentos de destruição de restos culturais do
algodoeiro, verificando eficiência próxima a 100%
em vários métodos de destruição (Figura 4).
Com relação ao controle químico, Ferreira et
al. (2015) avaliaram a eficiência de herbicidas
no controle de restos culturais de algodoeiro
(rebrota), definindo as melhores opções para a
região do estudo (Tabela 6). Um dos problemas do
controle químico é que a sua eficiência depende
da presença de umidade no solo na época da
aplicação. Em geral, consegue-se eficiência
elevada na destruição dos restos culturais quando
se combinam método de destruição mecânica com
aplicações de herbicidas (método químico).
A manutenção de restos culturais e plantas
voluntárias de algodoeiro, seja na lavoura
subsequente ao algodão ou em áreas adjacentes
(beiras de rodovias, áreas de confinamento,
entorno de algodoeiras), é garantia de local de
alimentação, abrigo e oviposição para os adultos
de bicudo remanescentes da safra. A população
da safra seguinte é formada a partir desses
indivíduos e os problemas decorrentes dos ataques
são prontamente sentidos pelos produtores
logo no início do florescimento do algodoeiro.
Por ocasião de um novo plantio, os indivíduos
sobreviventes da entressafra penetram na lavoura,
estabelecem-se nas bordaduras e alimentam-
se das partes vegetativas até o surgimento
dos primeiros botões florais. O surgimento das
estruturas reprodutivas nas plantas estimula a
movimentação do inseto pela área cultivada e
a partir daí ocorre um processo de distribuição
generalizada do inseto pela lavoura. No caso de
plantas de algodoeiro resistentes a herbicidas,
algumas sementes da safra anterior germinam
e se constituem em substrato de alimentação e
oviposição para o bicudo, localizando-se no interior
da cultura sucedânea e não sendo controlada
pelos herbicidas. A disponibilidade de alimento,
abrigo e oviposição, num cenário de utilização de
plantas de algodoeiro resistentes a herbicidas,
Figura 4. Controle de rebrota de plantas de algodoeiro transgênicas
resistentes ao herbicida glyphosate submetidos a diferentes métodos
de destruição de restos culturais.
Fonte: adaptado de Sofiatti et al. (2015).

Primeira aplicação
(depois do uso
do triturador*)
Segunda aplicação
(30 dias após a 1a
aplicação)
Terceira aplicação
(60 dias após a 1a
aplicação)
% de controle
Sem controle 24,3 d
2,4-D 2,4-D 2,4-D 100,0 a
2,4-D Carfentrazone-ethyl Carfentrazone-ethyl 97,8 a
2,4-D Paraquat Paraquat 99,2 a
2,4-D Carfentrazone-ethyl - 76,6 b
2,4-D Paraquat - 75,0 b
2,4-D - - 54,1 c
Tabela 6. Porcentagem de controle da rebrota de plantas de algodoeiro resistentes ao herbicida glifosato, aos 30
dias após a terceira aplicação dos herbicidas. Santa Helena de Goiás, 2013.
Fonte: adaptado de Ferreira et al. (2015).
cultivos de primeira e segunda safra, além da
presença de refúgios de vegetação nativa, permite
ao bicudo uma alta capacidade de sobrevivência e
reprodução no Cerrado brasileiro (Figura 5).
Vazio sanitário
A eliminação total dos restos culturais e plantas
voluntárias de algodão (plantas tigueras)
presentes nas áreas com cultivo posterior
ao algodoeiro (geralmente soja), ao longo de
rodovias ou em áreas de confinamento bovino,
evita a sobrevivência e a reprodução do bicudo.
Justamente para evitar a manutenção de pragas
e doenças na entressafra, após a colheita e
eliminação dos restos culturais, é necessário um
Figura 5. Representação esquemática da disponibilidade de substrato de alimentação, abrigo e
oviposição para o bicudo ao longo do ano no agroecossistema do Cerrado.
período sem a presença de plantas de algodão no
campo, por no mínimo 60 dias. O “vazio sanitário”
da cultura do algodão está compreendido entre
o prazo final legal para a destruição de restos
culturais e o início do calendário de semeadura da
nova safra.
No Mato Grosso, o vazio sanitário vai de 1 de
outubro a 30 de novembro na região I e de
15 de outubro a 14 de dezembro na região II
(MATO GROSSO, 2016). Em Goiás, o vazio
sanitário do algodoeiro é estabelecido de acordo
com a região (Tabela 7), sendo de no mínimo
80 dias em cada região de cultivo. Na Bahia, o
período de vazio sanitário está compreendido de
20 de setembro a 20 de novembro, exceto as

13
propriedades produtoras de algodão localizadas
no Território Sertão Produtivo e os municípios de
Bom Jesus da Lapa, Igaporã, Malhada, Matina,
Riacho de Santana e do Território do Velho
Chico, onde o vazio sanitário não é obrigatório
(BAHIA, 2016).
Controle pós-safra do bicudo com
soqueira-isca e dispositivos atrai-e-mata
Entre as medidas de final de safra, além da
aplicação de inseticidas na desfolha e/ou no
momento da destruição dos restos culturais
e da instalação de dispositivos atrai-e-mata
(tubos mata-bicudo), está a manutenção de
áreas com plantas vegetando após a colheita.
O método de controle em que as plantas
remanescentes na lavoura são submetidas a
aplicações sistemáticas de inseticidas para
controle do bicudo é denominado “soqueiras-isca”,
podendo ser também considerado uma técnica
de atrai-e-mata. Tática delicada por demandar
alto comprometimento técnico e constante
acompanhamento, a soqueira-isca somente
pode ser implementada dentro do período legal
de cultivo do algodoeiro ou com autorização
do órgão de defesa vegetal quando a prática
adentra o período de vazio sanitário da cultura na
região. A soqueira-isca tem grande capacidade de
atração dos bicudos remanescentes, que aliado
ao subsequente controle dos indivíduos atraídos
com aplicações sequenciais de inseticidas são
fundamentais para a redução populacional do
inseto na área (MIRANDA et al., 2015).
Para avaliar a eficiência das soqueiras-isca,
foi montado um experimento na entressafra
2013/2014, em propriedade localizada no
Município de Luziânia, GO. O experimento foi
instalado em área de 1.290 ha cultivada com
algodoeiro, sendo a área útil de cada tratamento
de aproximadamente 10 hectares (7.000 m de
comprimento por 16 m de largura). Na faixa de
transição entre a lavoura recém-colhida e o refúgio
foram instaladas armadilhas com feromônio
grandlure (específico para atração do bicudo) a
cada 140 metros (Figura 6).
Na área referente ao tratamento com soqueira-isca,
oito pulverizações de inseticidas foram efetuadas,
com intervalo médio de cinco dias, durante os 64
dias de período experimental (Figura 7).
Os insetos atraídos em maior quantidade pela
soqueira-isca foram eliminados pelas pulverizações
efetuadas a intervalos de cinco dias. Observa-
se que o número de insetos capturados no
tratamento com soqueira-isca foi maior que no
tratamento sem soqueira-isca, entretanto, na fase
final do experimento estes números foram muito
próximos entre os tratamentos (Figura 8). Desta
forma, pode-se inferir que as pulverizações com
inseticidas efetuadas na soqueira-isca promoveram
a redução da população atraída para o local.
Diferentemente das armadilhas iscadas com
feromônio, que servem para o monitoramento da
Região* Período do Vazio Sanitário
Acreúna, Ipameri, Itumbiara, Palmeiras de Goiás, Caiapônia** 05 de setembro a 25 de novembro
Chapadão do Céu, Mineiros***, Montividiu, Caiapônia**** 10 de setembro a 30 de novembro
Perolândia, Portelândia e Mineiros***** 15 de setembro a 05 de dezembro
Cocalzinho de Goiás, Cristalina, Formosa, Silvânia e Minaçu. 20 de agosto a 10 de novembro
Jussara, Matrinchã, Montes Claros de Goiás e São Miguel do Araguaia 01 de novembro a 20 de janeiro
* A relação completa dos municípios se encontra em GOIÁS, 2014; **abaixo de 600 metros de altitude; ***porção limítrofe a Chapadão do Céu;
****acima de 600 metros de altitude; *****exceto porção limítrofe a Chapadão do Céu.
Fonte: Goiás (2014).
Tabela 7. Período do vazio sanitário do algodoeiro de acordo com a região de plantio, no estado de Goiás.
Figura 6. Área experimental com manutenção de
soqueira-isca para avaliação de sua eficiência na atração
e no controle populacional de bicudos em fim de safra.
Luziânia, GO. Setembro a novembro de 2013. Faixa
em verde limão a área onde foram mantidas as plantas
como soqueira-isca; pontos em amarelo representam as
armadilhas instaladas.
Foto:
Raul
Souza
Maciel

área, a utilização do Tubo-Mata-Bicudos (TMB®
)
tem a finalidade de redução populacional da
praga, auxiliando no controle dos bicudos que
sobraram no fim de safra, os quais estariam
migrando para as áreas de refúgio. O TMB®
é
um dispositivo atrai-e-mata que é instalado nos
perímetros da lavoura para o controle específico
do bicudo; ele é um sistema que incorpora o uso
de feromônio grandlure com revestimentos que
contêm um inseticida (malationa) e um estimulante
de alimentação impregnados em um tubo
biodegradável de coloração amarelada, também
atrativa ao inseto (PLATO et al., 2001).
Os feromônios disponibilizados nos TMB®
têm
quatro vezes maior efeito atrativo do que as
armadilhas com feromônios (VILLAVASO et al.,
1993). Isto ocorre devido à maior concentração
de glandlure presente no dispositivo (SPURGEON
et al., 1998). A metodologia de uso dos TMB®
inicia com a instalação dos tubos no período de
pré-colheita, este estabelecido pela fazenda, em
intervalos de no mínimo 150 metros entre si.
Recomenda-se instalação em todo perímetro do
plantio, se não for possível, a instalação deve
ser pelo menos em perímetro da lavoura vizinha
as áreas de refúgio. A vida útil dos TMB®
é de
55-60 dias, então é recomendável uma segunda
instalação, após 50 dias da instalação do primeiro
lote. Nesse caso, não é necessária a retirada dos
primeiros tubos instalados, devendo a segunda
instalação ser colocada entre os primeiros tubos.
Lembrando que em seguida, aproximadamente
30 dias antes do plantio do algodão subsequente,
serão instaladas as armadilhas de monitoramento do
bicudo. Tais armadilhas devem distar pelo menos
50 metros dos TMB®
para que não haja competição
entre ambos (RODRIGUES et al., 2008) e, para o
número de bicudos observados nas armadilhas não ser
subestimado (RODRIGUES; MIRANDA, 2015). Após
Figura 7. Tratamento com soqueira-isca (A) e equipamento pulverizador aplicando inseticida contra bicudo-do-
algodoeiro (B). Fazenda Pamplona, Luziânia, GO. Setembro a novembro de 2013..
Figura 8. Evolução da captura de bicudos em áreas com e sem
soqueira-isca. Fazenda Pamplona, Luziânia, GO. 2013.
BAS = número de bicudos por armadilha por semana.
A B
Fotos:
Raul
Souza
Maciel

15
conhecidos os locais de entrada e saída do bicudo
para as áreas de refúgio (rota de movimentação),
através dos monitoramentos, é recomendável
a instalação de TMB®
nesses locais, visando
interceptar os indivíduos que estão se deslocando
dos refúgios para os talhões. Nestas áreas
críticas, pode-se diminuir o intervalo entre tubos
(aumentando seu número por local).
Transporte adequado do algodão e
subprodutos
O transporte adequado de algodão e subprodutos é
incentivado, de forma a se evitar a distribuição de
sementes que caem dos veículos transportadores
e a germinação de plantas voluntárias ao longo
das rodovias. As boas práticas incluem o
enlonamento e acondicionamento dos produtos
e subprodutos do algodão nas carrocerias dos
caminhões de transporte, utilização de saias
laterais para prevenção de quedas de estruturas
das carrocerias, envelopamento das cargas de
caroço, altura limite da carga transportada,
limpeza dos veículos, cobertura sobre locais de
acúmulo de caroço, recusa no carregamento e
descarte dos resíduos do beneficiamento.
Impacto da manutenção de bicudos
na entressafra sobre o próximo
cultivo do algodoeiro
Uma simulação efetuada considerando-se a
sobrevivência de indivíduos de bicudo no final
da safra mostra o impacto desta população na
safra seguinte: considerando-se 100.000 bicudos
remanescentes por hectare numa área com
soqueira destruída e sem plantas voluntárias e em
outra com soqueira não destruída ou com plantas
voluntárias de algodão na entressafra, tem-se dois
distintos cenários (Figura 9).
Estes dois cenários, totalmente possíveis,
demonstram a densidade populacional do bicudo
que estará presente na safra seguinte e dão uma
ideia do impacto que tal população causará, o que
implicará em maior ou menor custo de controle
do inseto, maior ou menor impacto ambiental
pela necessidade de aplicações de produtos
inseticidas no ambiente, maior ou menor risco
aos aplicadores, maior ou menor risco de perdas
na produção de algodão. Pior que isso, os dois
cenários podem coexistir, em propriedades
vizinhas. Portanto, a busca pelo melhor cenário
deve ser feita de forma regional, caso contrário o
esforço pode ser em vão.
Considerações finais
Quais seriam os caminhos mais seguros para
o sucesso no controle populacional do bicudo?
Embora complexa, a resposta envolve várias
questões estritamente ligadas a manejo da praga
em grandes áreas. Aqui nos reportamos ao termo
em inglês Area-Wide Pest Management e que
envolve princípios bastante pertinentes para pragas
de alta mobilidade, como é o caso do bicudo
do algodoeiro. Para estas pragas, o manejo em
grandes áreas é mais efetivo e preferível do que
ações pontuais e independentes de cada produtor e
considera que o problema é coletivo, necessitando
de ações comuns e integradas. O bicudo é
uma praga que tem alto impacto econômico e,
portanto, de baixa tolerância ao ataque, requerendo
políticas públicas, educação fitossanitária e
comprometimento da cadeia produtiva e dos
segmentos apoiadores do setor, como a pesquisa, a
extensão e a fiscalização. Os contextos ecológico,
ambiental e econômico devem coexistir enquanto
definidores de ações de controle, cuja dimensão
extrapola os limites da propriedade.
Figura 9. Simulação de cenários com e sem plantas de algodoeiro na entressafra e multiplicação
de bicudos.
Fonte: adaptado de Knipling (1986).

Isto significa que as medidas de controle populacional
da praga devem ser definidas regionalmente e cuja
adesão dos produtores deve ser total, bem como a
eficiência na execução deve ser a maior possível.
Referências
ALVAREZ, G. A. Bases técnicas para el cultivo
del algodonero em Colombia. Bogotá: Guadalupe,
1990. 43 p.
ARELLANO, M. C. D. Estudos ecofisiológicos
sobre o bicudo do algodoeiro, Anthonomus grandis
Boheman, 1843 (Coleoptera: Curculionidae).
1995. 116 p. Tese (Doutorado em Ecologia) −
Universidade Estadual de Campinas, Campinas.
AZAMBUJA, R.; DEGRANDE, P. E. Trinta anos do
bicudo-do-algodoeiro no Brasil. Arquivos do Instituto
Biológico, São Paulo, v. 81, n. 4, p. 377−410, out./
dez. 2014.
BAHIA. Secretaria da Agricultura, Pecuária, Irrigação,
Pesca e Aquicultura. Portaria no
229 de 1 jun. 2016.
Diário Oficial [da] República Federativa do Brasil
- Estado da Bahia, Salvador, 2 jun. 2016. Seção
Executivo, p. 9. Disponível em: <http://dovirtual.
ba.gov.br/egba/reader2/>. Acesso em: 9 ago. 2016.
BARBOSA, S.; BRAGA SOBRINHO, R.;
CAMPANHOLA, S. O bicudo do algodoeiro no
Brasil: ocorrência, distribuição geográfica e
medidas de erradicação propostas. In: BARBOSA,
S.; LUKEFAHR, M. J.; BRAGA SOBRINHO,
R. (Ed.). O bicudo do algodoeiro. Brasília, DF:
EMBRAPA-DDT, 1986. p. 7−29. (EMBRAPA –
DDT. Documentos, 4).
BASTOS, C. S.; PEREIRA, M. J. B.; TAKIZAWA,
E. K.; OHL, G. A.; AQUINO, V. R.de. Bicudo do
algodoeiro: identificação, biologia, amostragem
e táticas de controle. Campina Grande: Embrapa
Algodão, 2005. 31 p. (Embrapa Algodão. Circular
técnica, 79).
BELOT, J. L.; BARROS, E. M.; MIRANDA, J. E.
Riscos e oportunidades: o bicudo-do-algodoeiro. In:
DESAFIOS do Cerrado: como sustentar a expansão
da produção com produtividade e competitividade.
Cuiabá: Associação Mato-grossense dos Produtores
de Algodão, 2016. p. 77−118.
BRAGA SOBRINHO, R.; LUKEFAHR, M. J. O
bicudo (Anthonomus grandis Boheman): nova
ameaça à cotonicultura brasileira - biologia e
controle. Campina Grande: EMBRAPA-CNPA,
1983. 32 p. (EMBRAPA-CNPA. Documentos, 22).
BUSOLI, A. C.; SOARES, J. J.; LARA, F. M. O
bicudo do algodoeiro e seu manejo. Jaboticabal:
FUNEP, 1994. 32 p. (FUNEP. Boletim, 5).
CONFALONIERI, V. A.; SACTAGLINI, M. A.;
LANTERI, A. Origin and dispersal of the cotton
boll weevil (Coleoptera: Curculionidae) in South
America: a mtDNA Phylogeographic study. In:
INTERNATIONAL CONGRESS OF ENTOMOLOGY,
21.; BRAZILIAN CONGRESS OF ENTOMOLOGY,
18., 2000, Foz do Iguassu. Abstracts... Londrina:
Embrapa Soja, 2000. v. 1, p. 566. (Embrapa Soja.
Documentos, 143).
CRUZ, V. R. da. Algodão bicudo – atualização
técnica. Campinas: CATI, 1987. 6 p. (CATI.
Comunicado técnico, 71).
CRUZ, V. R. da. Instruções para o manejo
integrado das pragas do algodão, incluindo o
bicudo. Campinas: CATI, 1990. 46 p. (CATI.
Instrução prática, 244).
CUADRADO, G. A. Anthonomus grandis Boheman
(Coleoptera: Curculionidae) en la Zona Central y
Sur Oeste de Misiones, Argentina: polen como
fuente alimenticia y su relación con o estado
fisiológico en insectos adultos. Neotropical
Entomology, Londrina, v. 31, n.1, p. 121−132,
jan./mar. 2002.
DEGRANDE, P. E. Ameaça do bicudo exige
organização e empenho de todos. Visão Agrícola,
Piracicaba, n. 6, p. 55−58, jul./dez. 2006.
DEGRANDE, P. E. Bicudo do algodoeiro: táticas
de controle para o Mato Grosso do Sul. Dourados:
Universidade Federal do Mato Grosso do Sul,
1991. 16 p.
FERREIRA, A. C. B.; BOGIANI, J. C.; BORIN, A.
L. D. C.; MORAES, M. C. G.; BARBIERI, A. L.;
SANTOS, T. J. S. Destruição química dos restos
culturais de algodoeiros resistentes ao glyphosate.
In: CONGRESSO BRASILEIRO DO ALGODÃO,
10., 2015, Foz do Iguaçu. Resumos. Brasília, DF:
ABRAPA, 2015. p. 223−224.
GABRIEL, D. Longevidade do bicudo do algodoeiro
Anthonomus grandis Boh., criado em hospedeiras
alternativas no laboratório. Arquivos do Instituto
Biológico, São Paulo, v. 69, n. 3, p. 123−126,
jul./set. 2002.
GALLO, D.; NAKANO, O.; SILVEIRA NETO, S.;
CARVALHO, R. P. L.; BAPTISTA, G. C.; BERTI
FILHO, E.; PARRA, J. R. P.; ZUCCHI, R. A.;
ALVES, S. B.; VENDRAMIN, J. D.; MARCHINI,
L. C.; LOPES, J. R. S.; OMOTO, C. Entomologia
agrícola. Piracicaba: FEALQ, 2002. 920 p.

17
GOIÁS. Agência Goiania de Defesa Agropecuária.
Instrução normativa Agrodefesa nº 04/2014 de 4
jun. 2014. Diário Oficial, Goiânia, 10 jun. 2014.
p. 6. Disponível em: <http://www.abc.go.gov.
br/arquivos/diariooficial/2014/06/10/006.pdf>.
Acesso em: 9 ago. 2016.
GONDIN, D. M. C.; BELOT, J. L.; SILVIE, P.; PEITI,
N. Manual de identificação das pragas, doenças,
deficiências minerais e injúrias do algodoeiro no
Brasil. 3. ed. Cascavel: COODETEC: CIRAD-CA,
1999. 120 p. (Boletim técnico, 33).
GRIGOLLI, J. F. J.; CROSARIOL NETTO, J.;
IZEPPI, T. S.; SOUZA, L. A.; FRAGA, D. F.;
BUSOLI, A. C. Infestação de Anthonomus
grandis (Coleoptera: Curculionidae) em rebrota
de algodoeiro. Pesquisa Agropecuária Tropical,
Goiânia, v. 45, n. 2, p. 200-208, abr./jun, 2015.
HARDEE, D. D.; JONES, G. D.; ADAMS, L. C.
Emergence, movement, and hosts plants of boll
weevils (Coleoptera: Curculionidae) in the Delta
of Mississippi. Journal of Economic Entomology,
College Park, v. 92, n. 1, p. 130−139, Fev. 1999.
KNIPLING, E. F. Tecnologia disponível para
erradicação ou manejo do bicudo do algodoeiro.
In.: BARBOSA, S.; LUKEFAHR, M. J.; BRAGA
SOBRINHO, R. (Ed.). O bicudo do algodoeiro.
Brasília, DF: EMBRAPA-DDT, 1986. p. 31−63.
(EMBRAPA-DDT. Documentos, 4).
LEGGETT, J. E. Uso de armadilhas de feromônio
para levantamento, detecção e controle do bicudo.
In: BARBOSA, S.; LUKEFAHR, M. J. BRAGA
SOBRINHO, R. (Ed.). O bicudo do algodoeiro.
Brasília, DF: EMBRAPA-DDT, 1986. p. 145−158.
(EMBRAPA–DDT. Documentos, 4).
LUKEFAHR, M. J.; BARBOSA, S.; BRAGA
SOBRINHO, R. Plantas hospedeiras do bicudo com
referência especial à flora brasileira. In: BARBOSA,
S.; LUKEFAHR, M. J.; BRAGA SOBRINHO,
R. (Ed.). O bicudo do algodoeiro. Brasília, DF:
EMBRAPA-DDT, 1986. p. 275-285. (EMBRAPA-
DDT. Documentos, 4).
MACÊDO, J. A.; CASTELLANI, M. A.; SANTOS,
F. A. R.; OLIVEIRA, P. P.; MALUF, R. P. Fontes
alternativas de pólen utilizadas pelo bicudo-do-
algodoeiro em duas regiões produtoras de algodão
na Bahia. Revista Caatinga, Mossoró, v. 28, n. 3,
p. 255−262, jul./set. 2015.
MARTIN, D. F.; BARBOSA, S.; CAMPANHOLA, C.
Observações preliminares e comentários sobre
o bicudo do algodoeiro, no Estado de São Paulo.
Jaguariúna: EMBRAPA-CNPDA, 1987. 21 p.
(EMBRAPA-CNPDA. Circular técnica, 1).
MATO GROSSO. Instrução normativa conjunta
SEDEC/INDEA-MT nº 001/2016 de 4 maio 2016.
Dispõe sobre as medidas fitossanitárias para
controle do bicudo-do-algodoeiro no estado de
Mato Grosso. Diário Oficial do Estado de Mato
Grosso, Cuiabá, 4 maio de 2016. p. 64−66.
Disponível em: <https://www.iomat.mt.gov.br/
portal/edicoes/download/14486>. Acesso em: 9
ago. 2016.
MIRANDA, J. E.; PAGNONCELLI, A. ; SOUZA, R.
M. Uso de soqueira-isca como medida de controle
de bicudo (Anthonomus grandis) em áreas de baixa
prevalência. In: CONGRESSO BRASILEIRO DO
ALGODÃO, 10., 2015, Foz do Iguaçu. Resumos.
Brasília, DF: ABRAPA, 2015. p. 150−151.
MIRANDA, J. E.; TRIPODE, B M. D.; SILVA, I. R.
R. Influence of the crop border on the colonization
and dispersal of the boll weevil (Anthonomus
grandis) in Brazil. In: WORLD COTTON RESEARCH
CONFERENCE, 6., 2016, Goiânia. Proceedings.
England, UK: Innovation in Textiles, 2016.
NAKANO, O. Bicudo: a praga mais importante do
algodão. Agroquímica, São Paulo, v. 21, p. 10−14,
1983.
PLATO, T. A.; PLATO, J. C.; PLATO, J. S.;
PLATO, S. E. Results of the BWACT in boll weevil
control, prevention, suppression and eradication
programs in the Americas. In: BELTWIDE
COTTON CONFERENCES, 2001, Memphis, TN.
Proceedings. Memphis, TN: National Cotton
Council, 2001.
RAMALHO, F. S.; WANDERLEY, P. A. Ecology and
management of the boll weevil in South American
cotton. American Entomologist, Lanhan, v. 42, n. 1,
p. 41−47, 1996.
RAMIRO, Z. A.; NETTO, N. D.; NOVO, J.
P. S.; PURGATO, G. L. S.; CORREIA, M. F.
M.; SANTOS, R. C. Avaliação da eficiência
de inseticidas em função dos tipos de danos
ocasionados pelo bicudo do algodoeiro,
Anthonomus grandis Boheman, 1843 (Coleoptera:
Curculionidae). Anais da Sociedade Entomológica
do Brasil, Londrina, v. 21, n. 3, p. 401−411, set.
1992.
RIBEIRO, P. A.; SUJII, E. R.; DINIZ, I. R.;
MEDEIROS, M. A.; SALGADO-LABOURIAU, M.
L.; BRANCO, M. C.; PIRES, C. S. S.; FONTES, E.
M. G. Alternative food sources and overwintering
feeding behavior of the boll weevil, Anthonomus
grandis Boheman (Coleoptera: Curculionidae)
under the tropical conditions of Central Brazil.
Neotropical Entomology, Londrina, v. 39, n. 1,
p. 28−34, jan./fev. 2010.

RODRIGUES, S. M. M.; MIRANDA, J. E. Controle
etológico do bicudo-do-algodoeiro. In: BELOT, J. L.
(Org.). O bicudo do algodoeiro (Anthonomus grandis
BOH., 1843) nos cerrados brasileiros: biologia
e medidas de controle. Cuiabá: Instituto Mato-
Grossense do Algodão, 2015. v. 2, p. 95−116.
RODRIGUES, S. M. M.; MIRANDA, J. E.;
MENEZES, V. L. Influência da presença do
Tubo Mata-Bicudo (TMB) na captura de bicudo
do algodoeiro em armadilhas. In: CONGRESSO
BRASILEIRO DE ENTOMOLOGIA, 22., 2008,
Uberlândia. Ciência, tecnologia e inovação:
resumos. Uberlândia: SEB, 2008.
SANTOS, W. J. Monitoramento e controle das
pragas do algodoeiro. In: CIA, E.; FREIRE, E. C.;
SANTOS, W. J. (Ed.). Cultura do algodoeiro.
Piracicaba: Potafós, 1999. p. 133−179.
SANTOS, W. J. Recomendações técnicas para
a convivência com o bicudo do algodoeiro
(Anthonomus grandis, Boheman, 1843), no Estado
do Paraná. Londrina: IAPAR, 1989. 20 p. (IAPAR.
Circular, 64).
SILVA, N. M. da; CARVALHO, L. H.; CIA, E.;
FUZATTO, M. G.; CHIAVEGATO, E. J.; ALLEONI,
L. R. F. Seja o doutor do seu algodoeiro.
Piracicaba: Potafós, 1995. 24 p. (POTAFOS.
Arquivo do agrônomo, 8).
SILVA NETO, P. C. Diagnóstico da ocorrência
do bicudo do algodoeiro Anthonomus grandis,
Boheman, no Brasil. In: INFORMAÇÕES técnicas
sobre a ocorrência das pragas. Brasília, DF:
Ministério da Agricultura, 1987. p. 8−34.
(Boletim técnico, 1).
SILVIE, P.; LEROY, T.; BELOT, J. L.; MICHEL, B.
Manual de identificação das pragas, e seus danos
no algodoeiro. Cascavel: COODETEC: CIRAD-CA,
2001. 100 p. (Boletim técnico, 34).
SOARES, J. J.; YAMAMOTO, P. T.
Comportamento de oviposição de Anthonomus
grandis Boh. (Coleoptera:Curculionidae) em
diferentes níveis de infestação natural. Anais da
Socidade Entomológica do Brasil, Londrina, v. 22,
n. 2, p. 333−339, jun. 1993.
SOFIATTI, V.; SILVA, O. R. R. F.; ANDRADE
JUNIOR, E. R.; FERREIRA, A. C. B. Destruição dos
restos culturais do algodoeiro. Campina Grande:
Embrapa Algodão, 2015. 20 p. (Embrapa Algodão.
Boletim de pesquisa e desenvolvimento, 96).
SPURGEON, S. D.; RAUSLTON, J. R.; CANTU,
R. V.; COPPEDGE, J. R. Competitive interactions
and relative attractancy of boll weevil pheromone
traps and bait sticks. In: BELTWIDE COTTON
CONFERENCES, 1998, San Diego, CA.
Proceedings. Memphis: National Cotton Council,
1998. v. 1, p. 1158−1162.
VILLAVASO, E. J.; MCKIBBEN, G. J.; SMITH, J.
W. Comparing boll weevil bait sticks to pheromone
traps. In: BELTWIDE COTTON CONFERENCES,
1993, Memphis, TN. Proceedings. Memphis:
National Cotton Council, 1993. p. 926−927.
WHITE, J. R.; RUMMEL, D. R. Emergence profile
of overwintered boll weevils and entry into cotton.
Environmental Entomology, College Park, v. 7, n. 1,
p. 7−14, Feb. 1978.
YOUNG JUNIOR, D. F. Cotton insect control.
Birmingham: Oxmoor House, 1969. 185 p.
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edição (2016): on-line
Presidente: Valdinei Sofiatti
Secretário-Executivo: Geraldo Fernandes de S. Filho
Membros: Dartanhã José Soares, Everaldo Paulo de
Medeiros, Francisco José Correia Farias,
João Henrique Zonta, José Ednilson
Miranda, Máira Milani, Nair Helena Castro
Arriel e Thaise Dantas de Almeida Xavier
Supervisão editorial: Geraldo Fernandes de S. Filho
Revisão de texto: Camilla Souza de Oliveira
Normalização bibliográfica: Ana Lucia D. de Faria
Editoração eletrônica: Geraldo Fernandes de S. Filho
Circular
Técnica, 140
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