Medio CTA
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El Medio CTA se utiliza para estudios de motilidad y fermentación de carbohidratos de microorganismos fastidiosos como Neisseria. Contiene nutrientes como peptonas y extracto de levadura que permiten el crecimiento bacteriano. Su consistencia semisólida permite detectar la motilidad, y al añadir carbohidratos específicos se pueden diferenciar microorganismos por sus reacciones de fermentación.
Medio CTA
- 1. Medio CTA Cat. 1502 Para el mantenimiento de cepas en estudios de motilidad y fermentación de carbohidratos. Información práctica Aplicaciones Categorias Cultivo Microorganismos fastidiosos Principios y usos El Medio CTA (Cystine Tryptic Agar) es una base nutritiva, un medio semisólido que contiene peptonas ricas en triptófano y vitaminas. Se utiliza para la determinación de la motilidad de microorganismos fastidiosos, para pruebas de fermentación con la adición de carbohidratos y para la clasificación de levaduras, pudiendo determinar las reacciones de fermentación de microorganismos fastidiosos, p. Ej. Neisseria patógena. La peptona de caseína proporciona nitrógeno, vitaminas, minerales y aminoácidos esenciales para el crecimiento. El extracto de levadura es una fuente de vitaminas, particularmente del grupo B, esencial para el crecimiento bacteriano. El cloruro de sodio suministra electrolitos esenciales para el transporte y el equilibrio osmótico. L-cistina y sulfito de sodio son los agentes reductores. El rojo fenol es el indicador de pH. El agar bacteriológico es el agente solidificante. La consistencia semisólida del medio es adecuada para detectar la motilidad de algunos microbios. Con la adición de una concentración del 1% de un carbohidrato específico, se podrá diferenciar a los microorganismos fastidiosos por medio de reacciones de fermentación. Sin la adición de carbohidratos, se recomienda como medio de retención para microorganismos fastidiosos a 25 ºC. Los organismos patógenos como Neisseria, Pasteurella, neumococos, estreptococos, Brucella, Corynebacteria y Vibrio crecen bien en el medio CTA sin agregar dióxido de carbono, suero o cualquier otra sustancia de enriquecimiento. Los cultivos sembrados en profundidad con organismos móviles crecen a partir de la línea de inoculación. Los microorganismos no móviles permanecen solo dentro del área inoculada, mientras que el agar circundante permanece transparente. Para las pruebas de fermentación con miembros de Neisseria, inocular solo la superficie de los tubos. Las especies de Neisseria generalmente producen ácido en el área de la inoculación (tercio superior) solamente. Si hay un ácido fuerte (color amarillo) en todo el medio, puede estar presente un organismo contaminante. En caso de duda sobre un tubo que contiene una especie de Neisseria, se debe realizar una prueba de tinción de Gram y de oxidasa en el crecimiento. Los microorganismos facultativos, como los estreptococos y los microorganismos estrictamente anaeróbicos, pueden inocularse mediante punción a la mitad de la profundidad del tubo. Las reacciones ácidas se pueden observar fácilmente, ya que el ácido producido no se propaga inmediatamente por todo el tubo. La mayoría de los cultivos muestran una reacción alcalina cuando no hay carbohidratos fermentables presentes. Fórmula en g/L Agar bacteriológico 2,5 Peptona de caseína 20 L-Cistina 0,5 Rojo fenol 0,017 Cloruro sódico 5 Sulfito de sodio 0,5 Extracto de levadura 0,2 Preparación Suspender 28,5 gramos del medio en un litro de agua destilada. Si lo desea, agregue 0,5 a 1,0% de carbohidratos para una prueba de fermentación específica. Mezclar bien y disolver por calentamiento con agitación frecuente. Hervir durante un minuto hasta su completa disolución. Esterilizar en autoclave a 118 ºC durante 15 minutos. Enfriar a 50 ºC, mezclar bien y dispensar en tubos. Dejar enfriar en posición inclinada. Instrucciones de uso Para diagnóstico clínico, el tipo de muestra es bacterias aisladas de muestras clínicas. - Inocular el agar del tubo de manera vertical. - Incubar en condiciones aeróbicas a 35±2 ºC durante 18-24 horas. Inspired by knowledge www.condalab.com Página 1 de 2 - Nº revisión 0 - Fecha 13/05/2019
- 2. - Lectura e interpretación de los resultados. Control de calidad Solubilidad Apariencia Color del medio deshidratado Color del medio preparado Final pH (25ºC) Sin restos Polvo fino Beige rosado Rosa 7,3±0,2 Test microbiológico Condiciones de incubación: (35±2 ºC / 18-24 h). Microrganismos Especificación Reacción característica Neisseria gonorrhoeae ATCC 19424 Buen crecimiento Móvil Escherichia coli ATCC 25922 Buen crecimiento Móvil Staphylococcus aureus ATCC 25923 Buen crecimiento No móvil Almacenamiento Temp. Min.:2 ºC Temp. Max.:25 ºC Bibliografía Vera J. Bact. 55:531. 1948. Peterson and Hartsell J. Inf. Dis. 96:75. 1975. Myers and Kashy AJPH. 51:1872. 1962. Alford, Wiese and Guntor. J. Bact. 69:516. 1955. Kroeger and Sibel. J. Bact. 58:270. 1949. Vera and Petran. Bull. Nati. Assin. Clin. Lab. 5:90. 1954. Fahlberg, Dukes and Gunthrio. J. Invest. Derma. 29:111. 1955. Inspired by knowledge www.condalab.com Página 2 de 2 - Nº revisión 0 - Fecha 13/05/2019