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MANUAL DE
BIOSSEGURANÇA
PARA SERVIÇOS DE SAÚDE
Carla Maria Oppermann
Lia Capsi Pires

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MANUAL DE BIOSSEGURANÇA PARA SERVIÇOS DE SAÚDE
Prefeitura Municipal de Porto Alegre
Prefeito Municipal
João Verle
Secretário Municipal da Saúde
Joaquim Kliemann
Coordenador da Coordenadoria Geral de Vigilância da Saúde
Marcelo Bósio
Catalogação na publicação: Raquel Simone Nystron CRB 10/1065
Tiragem: 5.000 exemplares
Distribuição Gratuita
É permitida a reprodução total ou parcial desta publicação desde que citada a fonte.
Porto Alegre, janeiro de 2003
O62m
Oppermann, Carla Maria
Manual de biossegurança para serviços de saúde. / Carla
Maria Oppermann, Lia Capsi Pires. — Porto Alegre :
PMPA/SMS/CGVS, 2003.
80p. : il.
1. Biossegurança. 2. Controle de infecção. 3.
Equipamentos de proteção. I. Pires, Lia Capsi. II. Título.
CDU 614.8

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Introdução ...............................................................................................................................5
CAPÍTULO 1
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Os germes e a origem das infecções .....................................................................................7
CAPÍTULO 2
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Como nos proteger durante nosso trabalho em saúde ..........................................................9
CAPÍTULO 3
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Higienização das mãos ........................................................................................................ 17
CAPÍTULO 4
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Higienização do ambiente.................................................................................................... 23
CAPÍTULO 5
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Preparo dos materiais para uso no atendimento ao paciente ............................................. 27
CAPÍTULO 6
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Preparo do ferimento, pele ou mucosa do paciente ............................................................ 57
CAPÍTULO 7
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Tuberculose – cuidados de prevenção da transmissão ...................................................... 61
CAPÍTULO 8
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Acidente com sangue e/ou secreções – atendimento do profissional exposto................... 67
CAPÍTULO 9
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Coleta seletiva dos resíduos sólidos de saúde.................................................................... 71
Referências .......................................................................................................................... 75
SUMÁRIO
SUMÁRIO
SUMÁRIO
SUMÁRIO
SUMÁRIO
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E
ste Manual foi pensado e elaborado a partir da constatação, por parte da Comissão de
Biossegurança, atuante desde 1999, de que a Rede Ambulatorial de Serviços Municipais de
Saúde demonstra necessidade de mudanças de infra-estrutura física tratando-se de condi-
ções compatíveis com os processos de controle de infecções, mas fundamentalmente mudanças de práti-
cas e padronização das rotinas dos serviços, que permitam a implementação de medidas eficazes de
Biossegurança.
A biossegurança é um processo funcional e operacional de fundamental importância em serviços de
saúde, não só por abordar medidas de Controle de Infecções para proteção da equipe de assistência e
usuários em saúde, mas por ter um papel fundamental na promoção da consciência sanitária, na comuni-
dade onde atua, da importância da preservação do meio ambiente na manipulação e no descarte de
resíduos químicos, tóxicos e infectantes e da redução geral de riscos à saúde e acidentes ocupacionais. A
biossegurança é um processo progressivo, que não inclui conclusão em sua terminologia, pois deve ser
sempre atualizado e supervisionado e sujeito a exigência de respostas imediatas ao surgimento de micror-
ganismos mais resistentes e agressivos identificados pelas notificações epidemiológicas da Equipe de
Controle Epidemiológico da SMS.
INTRODUÇÃO
INTRODUÇÃO
INTRODUÇÃO
INTRODUÇÃO
INTRODUÇÃO
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Enquanto instrumento de atualização e aperfeiçoamento, este Manual tem como principal desafio
socializar informações técnico-científicas de biossegurança e permitir o treinamento de profissionais de
saúde, estabelecendo equipes integradas, sem exclusividade no domínio de determinadas tarefas meio,
mas capazes de conhecerem e executarem rotinas padronizadas com a seqüência de processos de
biossegurança, de cujo desempenho dependerá a eficácia na redução de riscos à saúde a todos os que
direta ou indiretamente são agentes de sua atenção.
Considerando a disposição e interesse de nossos profissionais, e conscientes das limitações e
dificuldades que estas mudanças impõem, nossa expectativa é de que possamos qualificar nossa prática,
agregando conhecimentos e potencializando nossa resolutividade nas questões relacionadas a condições
biosseguras de trabalho para as quais nossa Comissão foi constituída e permanecerá comprometida e
disponível.

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s germes são seres vivos infinitamente pequenos, não sendo possível vê-los a olho nú. Para
serem visualizados, precisamos da ajuda de um microscópio. Por isso são chamados de
microrganismos ou micróbios = micro (pequeno) bio (vida).
Estes micróbios são classificados em:
- protozoários
- fungos
- vírus
- bactérias
Como exemplo de doenças causadas por protozoários temos a Giardíase, doença intestinal que
causa diarréia, a Doença de Chagas causada pelo trypanossoma ou a Toxoplasmose, doença transmitida
pelo gato ou carne mal cozida de porco e carneiro contaminados. Das doenças causadas por fungos,
temos as micoses de pele e a Candidíase oral (sapinho) ou vaginal. Exemplos de doenças causadas por
vírus temos a Gripe, a Hepatites e a AIDS. Como doenças bacterianas, os furúnculos, as amigdalites, as
cistites, as diarréias e as pneumonias causadas por estes germes são alguns exemplos. Assim, fica ilus-
trado que os microrganismos, também chamados de agentes infecciosos, podem causar infecção.
Infecção é uma doença caracterizada pela presença de agentes infecciosos que provocam danos
em determinados órgãos ou tecidos do nosso organismo causando febre, dor, eritema (vermelhidão), edema
(inchaço), alterações sangüíneas (aumento do numero de leucócitos) e secreção purulenta do local afeta-
do, muitas vezes.
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CAPÍTULO 1
APÍTULO 1
APÍTULO 1
APÍTULO 1
APÍTULO 1
OS GERMES E A ORIGEM
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DA
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A
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AS INFECÇÕES
S INFECÇÕES
S INFECÇÕES
S INFECÇÕES
S INFECÇÕES
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O nosso contato com microrganismos não significa obrigatoriamente que desenvolveremos doen-
ças, muito pelo contrário, o homem, os animais e as plantas não apenas convivem com os germes, mas
dependem direta ou indiretamente deles. Todas as áreas da Terra, que reúnem condições de vida, são
habitadas por microrganismos e nós sempre convivemos com eles; inclusive em nosso corpo, onde eles
auxiliam na proteção de nossa pele e mucosas contra a invasão de outros germes mais nocivos. Estes
seres vivos minúsculos decompõem matéria orgânica transformando-a em sais minerais prontos para
serem novamente sintetizados em substratos nutritivos que formarão os vegetais do qual homem e ani-
mais se alimentam. O homem (hospedeiro) e os germes (parasitas) convivem em pleno equilíbrio. Somen-
te a quebra desta relação harmoniosa poderá causar a doença infecção.
A doença infecciosa é uma manifestação clínica de um desequilíbrio no sistema parasito-hospedei-
ro-ambiente, causado pelo aumento da patogenicidade do parasita em relação aos mecanismos de defesa
antiinfecciosa do hospedeiro, ou seja, quebra-se a relação harmoniosa entre as defesas do nosso corpo e
o número e virulência dos germes, propiciando a invasão deles nos órgãos do corpo. Alguns microrganis-
mos possuem virulência elevada podendo causar infecção no primeiro contato, independente das nossas
defesas. Outros, usualmente encontrados na nossa microbiota normal, não são tão virulentos, mas podem
infectar o nosso organismo se diminuímos a nossa capacidade de defesa.
A capacidade de defesa antiinfecciosa é multifatorial, pois é influenciada pela nossa idade
(bebês e idosos), estado nutricional, doenças e cirurgias, stress, uso de corticóides, quimioterapia,
radioterapia, doenças imunossupressoras (HIV, leucemia), fatores climáticos e precárias condições
de higiene e habitação.
Na natureza, o estado de esterilidade, definido como ausência de microrganismo vivo, é ex-
cepcional e transitoriamente encontrado no feto durante a gestação, excluindo os casos de bebês
contaminados via placentária pela mãe. O contato com os microrganismos começa com o nascimen-
to, durante a passagem pelo canal vaginal do parto, onde a criança se contamina com os germes da
mucosa vaginal e então se coloniza mantendo-se por toda a sua existência, até a decomposição total
do organismo após a sua morte.

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CAPÍTULO 2
APÍTULO 2
APÍTULO 2
APÍTULO 2
APÍTULO 2
COMO NOS PROTEGER DURANTE
NOS
NOS
NOS
NOS
NOSS
S
S
S
SO TRABALHO EM S
O TRABALHO EM S
O TRABALHO EM S
O TRABALHO EM S
O TRABALHO EM SAÚDE
AÚDE
AÚDE
AÚDE
AÚDE
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urante o desenvolvimento de nosso trabalho na área da saúde, tanto no atendimento direto
ao paciente ou nas atividades de apoio, entramos em contato com material biológico. Como
material biológico, nos referimos a sangue, secreções e excreções tipo vômito, urina, fezes,
sêmen, leite materno, escarro, saliva e outros fluidos corporais. Estes materiais biológicos podem estar
alojando microrganismos, por isso consideramos estes fluidos de pacientes ou os equipamentos e ambi-
ente que tiveram contato com eles, como potencialmente contaminados por germes transmissíveis de
doenças. Por não sabermos se os germes estão ou não presentes nestes equipamentos, vamos sempre
considerá-los contaminados. Desta forma, na nossa rotina de trabalho sempre devemos estar conscientes
da importância de nos protegermos ao manipularmos materiais, artigos, resíduos e ambiente sujos de
sangue e/ou secreções.
Para nossa proteção usaremos as Precauções Padrão, que são cuidados e equipamentos que irão
bloquear a transmissão de microrganismos evitando a nossa contaminação, a dos pacientes e do ambi-
ente de trabalho.
PRECAUÇÕES PADRÃO
Cuidados
• Lavagem das Mãos
A lavagem rotineira das mãos com água e sabão, elimina além da sujidade (sujeira) visível ou não,
todos os microrganismos que se aderem a pele durante o desenvolvimento de nossas atividade mesmo
estando a mão enluvada. A lavagem das mãos é a principal medida de bloqueio da transmissão de ger-
mes. Devemos lavar as mãos sempre, antes de iniciarmos uma atividade e logo após seu término, assim
como fazemos em nosso dia a dia antes das refeições e após a ida ao banheiro. Mantenha suas unhas
curtas e as mãos sem anéis para diminuir a retenção de germes. Leia no Capítulo 3 mais informações.
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Exemplo de caixa de descarte de materiais pérfuro-cortantes
• Manipulação de Instrumentos e Materiais
Os instrumentos e materiais sujos com sangue, fluidos corporais, secreções e excreções devem ser
manuseados de modo a prevenir a contaminação da pele e mucosas (olhos, nariz e boca), roupas, e ainda,
prevenir a transferência de microrganismos para outros pacientes e ambiente. Todos os instrumentos
reutilizados tem rotina de reprocessamento. Verifique para que estes estejam limpos ou desinfetados/
esterilizados adequadamente antes do uso em outro paciente ou profissional. Confira se os materiais
descartáveis de uso único estão sendo realmente descartados e se em local apropriado.
• Manipulação de Materiais Cortantes e de Punção
Ao manusear, limpar, transportar ou descartar agulhas, lâminas de barbear, tesouras e outros instru-
mentos de corte tenha cuidado para não se acidentar. A estes materiais chamamos de instrumentos pérfuro-
cortantes. Eles devem ser descartados em caixas apropriadas, rígidas e impermeáveis que devem ser
colocadas próximo a área em que os materiais são usados. Nunca recape agulhas após o uso. Não remo-
va com as mãos agulhas usadas das seringas descartáveis e não as quebre ou entorte. Para a reutilização
de seringa anestésica descartável ou carpule, recape a agulha introduzindo-a no interior da tampa e
pressionando a tampa ao encontro da parede da bandeja clínica de forma a não utilizar a mão neste
procedimento. Seringas e agulhas reutilizáveis devem ser transportadas para a área de limpeza e esteri-
lização em caixa de inox ou bandeja.

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• Ambiente e Equipamentos
Toda a unidade de saúde deve ter rotinas de limpeza e desinfecção de superfícies do ambiente e de
equipamentos. Colabore na supervisão para conferir se estas medidas estão sendo seguidas. Verifique
estas rotinas nos próximos capítulos. Proteja as superfícies do contato direto, como botões, alças de
equipamentos, teclados, mouses e monitores com barreiras do tipo filme plástico (PVC), papel alumínio ou
outros materiais próprios a este fim. Este procedimento impede a aderência da sujidade, requerendo ape-
nas desinfecção na hora da troca de barreiras entre pacientes, dispensando a limpeza da superfície do
equipamento.
• Roupas e Campos de Uso no Paciente
Manipule e transporte as roupas sujas com sangue, fluidos corporais, secreções e excreções com
cuidado. Transporte-as em sacos plásticos. Os serviços de saúde que utilizam rouparia e campos reutilizáveis
devem ter um sistema de lavanderia, própria ou terceirizada que garanta a desinfecção destas roupas.
• Vacinação
Todos os profissionais de saúde devem estar vacinados contra a hepatite B e o tétano. Estas vaci-
nas estão disponíveis na rede pública municipal. Participe de todas as campanhas de vacinação que a
Secretaria Municipal de Saúde promove. Vacina é proteção específica de doenças. Previna-se!
Equipamentos de Proteção Individual
• Luvas
As luvas protegem de sujidade grosseira. Elas devem ser usadas em procedimentos que envolvam
sangue, fluidos corporais, secreções, excreções (exceto suor), membranas mucosas, pele não íntegra e
durante a manipulação de artigos contaminados. As luvas devem ser trocadas após contato com material
biológico, entre as tarefas e procedimentos num mesmo paciente, pois podem conter uma alta concentra-
ção de microrganismos. Remova as luvas logo após usá-las, antes de tocar em artigos e superfícies sem
material biológico e antes de atender outro paciente, evitando a dispersão de microrganismos ou material
biológico aderido nas luvas. Lave as mãos imediatamente após a retirada das luvas para evitar a transfe-
rência de microrganismos a outros pacientes e materiais, pois há repasse de germes para as mãos mesmo
com o uso de luvas. As luvas estéreis estão indicadas para procedimentos invasivos e assépticos. Luvas
grossas de borracha estão indicadas para limpeza de materiais e de ambiente.

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Luvas de procedimento, luvas estéreis e luvas de borracha
• Máscaras, Óculos de Proteção ou Escudo Facial
A máscara cirúrgica e óculos de proteção ou escudo facial são utilizados em procedimentos e ser-
vem para proteger as mucosas dos olhos, nariz e boca de respingos (gotículas) gerados pela fala, tosse ou
espirro de pacientes ou durante atividades de assistência e de apoio. Estas gotículas geradas por fonte
humana tem diâmetro de até 5µ e se dispersam até um metro de distância quando se depositam nas
superfícies. Elas podem ser de sangue, fluidos corporais, secreções e excreções ou líquidos contamina-
dos como aquelas geradas durante a lavagem de materiais contaminados. Os procedimentos de maior
risco e dispersão de respingos são: broncoscopia, aspiração oral, nasal ou endotraqueal, passagem de
sonda gástrica, cirurgias, suturas, técnicas laboratoriais de bioquímica e microbiologia e atendimento
odontológico. Outra indicação de uso destes equipamentos é durante a manipulação de produtos quími-
cos como em farmácia hospitalar, áreas de expurgo ou de desinfecção de artigos onde existe o risco
químico de contato. As máscaras cirúrgicas devem ter um filtro bacteriano de até 5 µ de diâmetro. São de
uso único, mas durante procedimentos de longa duração, sua troca deverá ocorrer quando úmidas ou
submetidas a respingos visíveis.

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Máscara e óculos ou escudo facial
• Protetor respiratório (respiradores)
Usado para proteger as vias respiratórias contra poeiras tóxicas e vapores orgânicos ou químicos. É
indicado para entrar em quarto de isolamento de pacientes com tuberculose pulmonar, sarampo ou varice-
la, doenças que são transmitidas via aérea quando inalamos os núcleos de gotículas ressecadas suspensas
no ar contendo os germes. Também é indicado no laboratório de microbiologia em técnicas de identifica-
ção do bacilo da tuberculose (veja Capítulo 7). Outra indicação para o uso do protetor respiratório, de um
tipo específico, é no manuseio prolongado de glutaraldeído 2% usado para desinfecção de artigos em
ambiente pouco arejado, desde que este protetor tenha uma camada de carvão ativado (máscara escura).
Este protetor com carvão ativado filtra gases tóxicos e odores. Seu uso também está indicado para ambi-
entes ou atividades com odor fétido e desagradável.
É de uso individual, intransferível e reutilizável. Tem vida útil variável dependendo do tipo de
contaminante, sua concentração, da freqüência respiratória do usuário e da umidade do ambiente. Deve
ser trocado sempre que se encontrar saturado (entupido), perfurado, rasgado ou com elástico solto, ou
quando o usuário perceber o cheiro ou gosto do contaminante. Não deve ser feito nenhum tipo de reparo.
Manusear com as mãos limpas e guardar em local limpo.

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Funcionária usando protetor respiratório com carvão ativado
durante a desinfecção com glutaraldeído 2%
Instruções de uso do protetor respiratório:
- Segure o respirador na mão e aproxime no rosto cobrindo a boca e o nariz.
- Puxe o elástico de cima, passando-o pela cabeça e ajustando-o acima das orelhas. Depois faça o
mesmo com o elástico inferior, ajustando-o na nuca.
- Pressione o elemento metálico com os dedos de forma a moldá-lo ao formato do nariz.
- Para verificar o ajuste, coloque as mãos na frente do respirador e assopre fortemente. O ar não
deve vazar pelas laterais.
- Para retirar, comece pelo elástico de baixo das orelhas e depois o outro.
- Profissionais imunizados por sarampo e varicela não necessitam de proteção respiratória, deven-
do estes serem escalados para o atendimento de pacientes portadores destas doenças infecciosas.

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• Avental e gorro
O avental (limpo, não estéril) serve para proteger a pele e prevenir sujidade na roupa durante proce-
dimentos que tenham probabilidade de gerar respingos ou contato de sangue, fluidos corporais, secre-
ções ou excreções. O avental será selecionado de acordo com a atividade e quantidade de fluido encon-
trado (plástico ou tecido). O avental de plástico está indicado para lavagem de materiais em áreas de
expurgo. O avental sujo será removido após o descarte das luvas e as mãos devem ser lavadas para evitar
transferência de microrganismos para outros pacientes ou ambiente.
O gorro estará indicado especificamente para profissionais que trabalham com procedimentos que
envolvam dispersão de aerossóis, projeção de partículas e proteção de pacientes quando o atendimento
envolver procedimentos cirúrgicos. É o caso da equipe odontológica e outras especialidades como oftal-
mologia, otorrinolaringologia, cirurgia geral, cirurgia vascular e outras especialidades cirúrgicas.
Tanto o avental quanto o gorro podem ser de diferentes tecidos laváveis ou do tipo descartável de
uso único. A lavagem domiciliar de aventais contaminados deve ser precedida de desinfecção, por 30
minutos em solução de hipoclorito de sódio a 0,02% (10ml de alvejante comercial a 2 a 2,5% para cada
litro de água).
• Calçados
Os calçados indicados para o ambiente com sujeira orgânica são aqueles fechados de preferência
impermeáveis (couro ou sintético). Evita-se os de tecido que umedecem e retém a sujeira. Escolha os
calçados cômodos e do tipo anti-derrapante. Se o local tiver muita umidade, como em lavanderias, usar
botas de borracha.

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CAPÍTULO 3
APÍTULO 3
APÍTULO 3
APÍTULO 3
APÍTULO 3
HIGIENIZAÇÃO D
HIGIENIZAÇÃO D
HIGIENIZAÇÃO D
HIGIENIZAÇÃO D
HIGIENIZAÇÃO DA
A
A
A
AS MÃOS
S MÃOS
S MÃOS
S MÃOS
S MÃOS
A
s mãos são a nossa principal ferramenta, pois são elas as executoras das nossas atividades.
A medida que tocamos nos objetos e nos pacientes entramos em contato com uma enorme
quantidade de microrganismos. Estes germes aderidos nas nossas mãos são repassados
para outros objetos e pacientes, assim como podemos transferí-los para outras partes do nosso corpo,
como os olhos e nariz ao nos coçarmos. Somente a lavagem das mãos com água e sabão irá remover
estes germes adquiridos e evitar a transferência de microrganismos para outras superfícies. Para aprofundar
os conhecimentos vamos ver como é formada a microbiota da nossa pele.
MICROBIOLOGIA DA PELE
• Flora residente
Formada por microrganismos que vivem (colonizam) na pele. Nas mãos, estes germes localizam-se
em maior quantidade em torno e sob as unhas e entre os dedos. Também são encontradas nas camadas
externas da pele, fendas e folículos pilosos. Por isso, a importância de mantermos as unhas curtas e evitar
o uso de anéis. Os microrganismos da flora residente não são facilmente removíveis, entretando são
inativados por antissépticos (álcool, clorexidina, iodóforos) (veja Capítulo 6). As bactérias mais comumente
encontradas são as Gram-positivas (Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Estreptococos
sp). A flora residente é de baixa virulência e raramente causa infecção, contudo pode ocasionar infecções
sistêmicas em pacientes imunodeprimidos e após procedimentos invasivos.
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• Flora transitória
É adquirida no contato com pacientes e superfícies contaminadas. Os microrganismos que a com-
põem permanecem na pele por um certo período podendo ser transferidos ou eliminados com a lavagem
das mãos. Suas bactérias são mais fáceis de serem removidas, pois se encontram na superfície da pele,
junto à gorduras e sujidades. Esta flora bacteriana é eliminada com água e sabão neutro. A flora transitória
das mãos é composta pelos microrganismos freqüentemente responsáveis pelas infecções hospitalares:
as bactérias Gram-negativas (Pseudomonas sp, Acinetobacter sp, Klebsiella sp), o que bem demonstra a
importância das mãos como veículo de transmissão.
INDICAÇÕES DA LAVAGEM DAS MÃOS
Existe uma gama enorme de momentos, durante o nosso trabalho, que a lavagem das mãos está
indicada. Mesmo que, durante os procedimentos, as luvas sejam utilizadas, após a retirada das luvas as
mãos devem ser lavadas. A luva irá nos proteger de uma contaminação grosseira de matéria orgânica,
porém a microporosidade da luva, a sua fragilidade que ocasiona furos e a possível contaminação na sua
retirada, indica que ocorreu contato de microrganismos na pele de nossas mãos. Sendo assim, mesmo
com o uso de luvas, as mãos devem ser lavadas após a sua retirada. Vamos as indicações dos momentos
em que as mãos são lavadas:
- após tocar fluidos, secreções e itens contaminados;
- após a retirada das luvas;
- antes de procedimentos no paciente;
- entre contatos com pacientes;
- entre procedimentos num mesmo paciente;
- antes e depois de atos fisiológicos;
- antes do preparo de soros e medicações.
Para a realização da lavagem das mãos necessitamos das seguintes instalações físicas:
- pia;
- saboneteira suspensa e vazada para sabonete em barra ou dispensador de sabonete
líquido. No caso de dispensador, se não for descartável, estabeleça uma rotina de limpe-
za semanal;
- toalheiro com toalhas de papel;
- torneira com fechamento automático, preferivelmente.

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Ao lavarmos as mãos estabelecemos uma sequência de esfregação das partes da mão com maior
concentração bacteriana que são: as pontas dos dedos, meio dos dedos e polegares. Vejamos a técnica
da lavagem das mãos:
- posicionar-se sem encostar na pia;
- abrir a torneira;
- passar o sabão (líquido ou barra) na
mão;
- friccionar as mãos dando atenção às
unhas, meio dos dedos, polegar, palmas
e dorso das mãos (tempo aproximado
de 15 segundos);
- enxaguar as mãos deixando a tornei-
ra aberta;
-enxugar as mãos com papel toalha;
- fechar a torneira com a mão prote-
gida com papel toalha, caso não te-
nha fechamento automático.
Meio dos Dedos
Unhas
Polegar Palmas Fechamento da torneira

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É importante lembrar que para melhor remoção da flora microbiana as mãos devem estar sem anéis
e com as unhas curtas, caso contrário, uma carga microbiana ficará retida nestes locais sendo passíveis
de proliferação e transmissão. Na lavagem rotineira das mão o uso de sabão neutro é o suficiente para a
remoção da sujeira, da flora transitória e parte da flora residente. O uso de sabões com antissépticos
devem ficar restritos a locais com pacientes de alto risco e no desenvolvimento de procedimentos cirúrgi-
cos e invasivos ou em situações de surto de infecção hospitalar.
USO DO ÁLCOOL GLICERINADO
Geralmente as instalações físicas no ambiente de trabalho tem poucas pias e temos uma demanda
grande de trabalho, de forma que lavamos pouco as mãos comparado ao número de vezes em que a
lavagem das mãos está indicada. Para substituir a lavagem das mãos, indicamos a aplicação de um
antisséptico de ampla e rápida ação microbiana que é o álcool glicerinado. O álcool glicerinado é compos-
to de álcool 70% mais 2% de glicerina para evitar o ressecamento das mãos. Ele irá destruir a flora aderida
Aplicação do álcool glicerinado
nas mãos no momento da aplicação, porém as mãos não
devem apresentar sujidade visível. Neste caso indica-se
a lavagem das mãos com água e sabão. Vejamos como
usar o álcool grlicerinado:
- aplicar o álcool glicerinado (3 a 5 ml) nas mãos e
friccionar em todas as faces da mão até secar na-
turalmente;
- não aplicar quando as mãos estiverem visivelmen-
te sujas.
O álcool glicerinado também pode ser usado como
antisséptico após a lavagem das mãos. Neste caso, a la-
vagem das mãos e posterior antissepsia está indicada
antes de procedimentos invasivos como punções, sonda-
gens, cateterizações e entubações. Outra indicação de
aplicação do álcool glicerinado após a lavagem das mão
é em caso de exposição da pele ao contato direto com
sangue e secreções.

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ANTISSEPSIA DAS MÃOS
A antissepsia é uma medida para inibir o crescimento ou destruir os microrganismos existentes nas
superfícies (microbiota transitória) e nas camadas externas (microbiota residente) da pele ou mucosa,
através da aplicação de um germicida classificado como antisséptico. A descontaminação depende da
associação de dois procedimentos: a degermação e a antissepsia. A degermação é a remoção de detritos,
impurezas e bactérias que se encontram na superfície da pele, sendo utilizado para esse procedimento
sabões e detergentes neutros. A antissepsia, como descrito acima, é a utilização de um antisséptico com
ação bactericida ou bacteriostática que irá agir na flora residente da pele. Existem vários tipos de
antissépticos com diferentes princípios ativos e diferentes veículos de diluição como degermante
sólido(sabão) ou cremoso; aquoso ou alcoólico. Variam também na sua ação, concentração e tempo de
efeito residual. Os antissépticos são indicados para a antissepsia das mãos dos profissionais e para pele
ou mucosa do paciente em áreas onde serão realizados procedimentos invasivos ou cirúrgicos. Os
antissépticos alcoólicos devem ser aplicados após a limpeza da área envolvida quando esta apresentar
sujidade visível.
Antissepsia das mãos antes de procedimentos cirúrgicos
• Instalações físicas:
- pia;
- escova c/ cerdas macias desinfetada e de uso individual ou descartável;
- dispensador com sabão neutro ou antisséptico degermante;
- dispensador com antisséptico alcoólico (obrigatório se não for usado antisséptico degermante);
- compressas esterilizadas;
• Técnica da antissepsia (escovação) das mãos:
- retirar jóias e adornos das mãos e manter unhas aparadas e sem esmalte;
- aplicar o sabão ou antisséptico degermante nas mãos (+ ou - 5 ml);
- iniciar com a escovação, somente nas unhas e espaços interdigitais, durante 01 minuto.
Esfregar sem uso de escova, com as próprias mãos, a palma, dorso e antebraço do membro
durante 04 minutos. Estaleleça uma seqüência sistematizada para atingir toda a superfície da
mão e antebraço num tempo total de 05 minutos. Proceder a antissepsia no outro membro;

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- enxaguar abundantemente as mãos e antebraço com água corrente;
- manter os braços elevados com as mãos acima do nível dos cotovelos;
- fechar a torneira com o cotovelo, caso não tenha fechamento automático;
- secar as mãos e antebraço com compressa estéril;
- aplicar antisséptico alcoólico, obrigatoriamente se foi usado apenas sabão neutro
para a esfregação.

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A
higiene tem como objetivo remover a sujidade. Entende-se que os resíduos retém microrga
nismos que podem, em algum momento, ser transmitidos tanto por contato direto como atra
vés de poeira suspensa no ar. Outro aspecto importante é o bem estar proporcionado por um
ambiente limpo e organizado, mesmo sendo em instalações físicas simples. Antes de iniciar o processo de
limpeza e desinfecção do ambiente, este deve ser organizado de modo que todos os objetos e materiais
estejam guardados, liberando as superfícies para facilitar a limpeza, além de contribuir para as condições
de trabalho da equipe. Lembramos ainda que as instituições de saúde tem o dever de dar o exemplo dos
princípios básicos da promoção da saúde, que são: a higiene do ambiente, do corpo e dos alimentos.
Por definição a limpeza é a remoção ou retirada de sujeira através de fricção de uma superfície com
água e sabão ou detergente. Quanto maior o acúmulo de sujidade em uma superfície, maior será o tempo
e força de fricção para sua remoção. Em ambiente fechado de assistência à saúde utiliza-se a varredura
úmida, feita através de rodo e panos úmidos. Não se utiliza varrer ou espanar as superfícies para não
dispersar partículas de poeira que podem se depositar nos artigos hospitalares, serem inaladas pela equi-
pe e usuários, ou ainda, contaminar ferimentos expostos.
O nosso ambiente de trabalho pode ser dividido em área física compreendendo o piso, paredes,
teto, portas e janelas; o mobiliário compreendendo cadeiras, mesas, balcões, macas, bancadas e pias; e,
ainda, equipamentos eletroeletrônicos e artigos hospitalares específicos da assistência. O reprocessamento
destes dois últimos será abordado no próximo capítulo.
C
C
C
C
CAPÍTULO 4
APÍTULO 4
APÍTULO 4
APÍTULO 4
APÍTULO 4
HIGIENIZAÇÃO DO AMBIENTE
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Área física: Mobiliário:
Piso Mesas
Paredes Balcões
Teto Macas
Portas Cadeiras
Janelas Pias
A limpeza deve obedecer princípios básicos. São eles:
• Periodicidade
Limpeza concorrente que é aquela realizada diariamente e logo após exposição à sujidade. Inclui o
recolhimento do lixo, limpeza do piso e superfícies do mobiliário geralmente uma vez por turno, além da
limpeza imediata do local quando exposto à material biológico.
Limpeza terminal que é aquela geral, realizada semanal, quinzenal ou mensalmente conforme a
utilização e possibilidade de contato e contaminação de cada superfície. Inclui escovação do piso e aplica-
ção de cêra, limpeza de teto, luminárias, paredes, janelas e divisórias.
• Seqüência
- Como primeiro passo, recomenda-se o recolhimento do lixo;
- Inicia-se a limpeza do local mais alto para o mais baixo, próximo ao chão;
- Limpa-se a partir do local mais limpo para o mais sujo ou contaminado;
- Inicia-se pelo local mais distante dirigindo-se para o local de saída de cada peça.
Área* Terminal Concorrente
Crítica Semanal Duas vezes por turno
Semi-crítica Quinzenal Uma vez por turno
Não crítica Mensal Duas vezes ao dia
*áreas críticas (pacientes graves, procedimentos invasivos e/ou cirúrgicos e odontológicos, isolamentos)
áreas semi-críticas (enfermarias, consultórios e ambulatórios, sala de espera)
áreas não críticas: (sem paciente,sala de lanche, almoxarifado, secretaria,
Indicação da rotina de limpeza terminal e concorrente de área física
.
).

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• Materiais
Luvas de borracha, baldes(2), panos(2), rodo, escovas (para chão, sanitário), esponjas de aço, palha
de aço, carrinho de limpeza, sacos de lixo (branco, verde e preto), papel higiênico, papel toalha.
• Produtos químicos
Sabão ou detergente, sapólio, hipoclorito de sódio 2% a 2,5% (alvejante como Q-Boa®, Clarina®,
Alvex®), pinho ou outro desinfetante aromatizado para sanitários, álcool 70%, ceras líquidas siliconadas
de preferência anti-derrapante usadas na limpeza terminal de piso.
• Técnica indicada
Seguir a técnica dos dois baldes:
1° Preparar um balde com a solução de
água e sabão ou detergente equivalente
a uma colher de sopa do detergente para
cada litro de água.
2° Preparar o outro balde com água pura
para o enxágüe. Esta água de enxágüe
deve ser renovada quando estiver suja.
3° Aplica-se na superfície o pano com a
solução de água e sabão, friccionando (for-
ça mecânica) para soltar a sujidade.
4° Enxaguar o pano na água de enxágüe
e aplicar na superfície removendo o sa-
bão e a sujeira.
5° Enxaguar o pano novamente, torcê-lo
e aplicar na superfície removendo o ex-
cesso de umidade. Pode-se usar dois pa-
nos, um para cada balde, facilitando a téc-
nica.
Técnica dos dois baldes

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• Dicas importantes
Em ambiente fechado de assistência à saúde utiliza-se a varredura úmida, feita através de rodo e
panos úmidos. Não se utiliza varrer ou espanar as superfícies para não dispersar partículas de poeira.
No caso de limpeza de piso, parede e teto, podemos utilizar o rodo com o pano para executar
a fricção.
Para coleções de sangue, vômitos, urina e outros fluidos, indica-se a aplicação de hipoclorito 1 a
2%(alvejante) sobre a secreção, deixando agir por minutos antes de remover com trapos ou papel a serem
desprezados no lixo ou então deve-se trocar a água de enxágüe que limpou o pano sujo. Em caso de
superfície suja com sangue ressecado, aplicar água oxigenada líquida 10 volumes antes da limpeza. O
hipoclorito puro pode também ser usado para remover manchas e mofo de superfícies (alvejamento).
Atenção: o hipoclorito corroe superfícies metálicas e desbota tecidos. Veja no próximo capítulo.
Na limpeza do mobiliário é de fundamental importância que se recolha e guarde em locais específi-
cos todos os objetos e materiais que ocupam as superfícies a serem limpas. Para superfícies metálicas,
plásticas, fórmicas e de granito, indica-se a aplicação de álcool 70% após a limpeza para a desinfecção.
De preferência para o mobiliário utilizamos baldes menores e panos específicos para esta finalidade. Se
isso não for possível os baldes e panos devem ser lavados antes da limpeza de outro local.

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O
preparo dos materiais para uso no atendimento aos pacientes prevê a elaboração de
uma rotina pelo responsável do controle de infecções na unidade de saúde. Para tal,
faz-se necessário que se estabeleça a identificação dos tipos de materiais para utiliza-
ção nas diversas ações de saúde básicas ou especializadas que o serviço preste a seus usuários.
Estes materiais estão incluídos nos seguintes grupos:
• equipamentos eletro-eletrônicos
• mobiliário médico-odontológico
• instrumentais de uso permanente
• materiais específicos de especialidades
• artigos médico-hospitalares
• equipamentos de proteção individual não descartáveis
Além do tipo de material é necessário classificá-lo de acordo com sua utilização direta ou indireta no
paciente, o que resultará em três grupos de artigos que determinará a forma de processamento a que será
submetido: limpeza, desinfecção ou esterilização. Os três grupos de artigos de acordo com a utilização
direta ou indireta no paciente são:
C
C
C
C
CAPÍTULO 5
APÍTULO 5
APÍTULO 5
APÍTULO 5
APÍTULO 5
PREP
PREP
PREP
PREP
PREPARO DOS MA
ARO DOS MA
ARO DOS MA
ARO DOS MA
ARO DOS MATERIAIS P
TERIAIS P
TERIAIS P
TERIAIS P
TERIAIS PARA US
ARA US
ARA US
ARA US
ARA USO
O
O
O
O
NO A
NO A
NO A
NO A
NO ATENDIMENTO A
TENDIMENTO A
TENDIMENTO A
TENDIMENTO A
TENDIMENTO AO P
O P
O P
O P
O PA
A
A
A
ACIENTE
CIENTE
CIENTE
CIENTE
CIENTE
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28
28
28
28
-artigos críticos: são os que penetram em mucosas ou pele, invadindo sistema vascular e tecidos
subepiteliais e expondo os materiais ao contato direto com sangue ou outros fluidos contaminantes. Fica
indicado sempre a esterilização com todas as etapas que incluem este processo. Exemplos: instrumental
cirúrgico, seringas e agulhas, espéculos ginecológicos, etc.
-artigos semi-críticos: são os que tem contato com pele ou mucosa íntegras, mas que para garantir
seu múltiplo uso devem passar pelo reprocessamento na forma de desinfecção de alto nível ou esteriliza-
ção. Exemplos: ponteiras de otoscópios, ambús, nebulizadores, etc.
-artigos não críticos : são de uso externo ao paciente, entrando em contato apenas com pele íntegra,
de manipulação pelos profissionais de saúde, o que exige que tenham um processamento específico na
forma de limpeza ou desinfecção de baixo nível (se foi exposto a material biológico). Exemplos: termôme-
tro, botões de equipamentos acionados pelo profissional, mesas auxiliares para procedimentos, coma-
dres, cubas, etc.
A seguir descreveremos o processamento dos artigos, indicando as etapas de cada tipo, e os produ-
tos mais indicados:
LIMPEZA
Consiste na remoção da sujidade da superfície de artigos e equipamentos, através da ação mecâni-
ca utilizando água e detergente, com posterior enxágüe e secagem. A grande carga microbiana está
concentrada na matéria orgânica, que consequentemente, será removida de uma superfície durante a
remoção da sujidade. A limpeza deve ser sempre realizada como primeira etapa de desinfecção ou este-
rilização, pois vai garantir a qualidade destes processos. O material orgânico aderido abriga os micróbios.
Inúmeros estudos comprovam que a presença da matéria orgânica inativa a ação de germicidas e impede
a penetração de produtos químicos ou meios físicos de esterilização, por não permitir uma exposição
direta da superfície do artigo ao agente desinfetante ou esterilizante. Ao realizarmos a limpeza de artigos
estamos expostos à fluidos contaminados e produtos químicos, sendo imprescindível a utilização de equi-
pamentos de proteção como óculos, máscara cirúrgica, avental plástico, braçadeiras plásticas e luvas de
borracha.
Produtos utilizados
• Detergente líquido, neutro e biodegradável
Modo de uso:
em superfícies: aplicar puro em um pano úmido ou escova, ou diluído em água (solução detergen-
te). Aplicar pano umedecido em água para o enxágue.

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Limpeza de material com imersão
prévia em solução detergente
em imersão: preparar a solução detergente na propor-
ção de 10 ml por litro de água, em recipiente onde os artigos
serão submersos. O tempo mínimo de exposição será de 30 mi-
nutos. Esta forma de uso previne o ressecamento da matéria
orgânica nos artigos. O tempo de exposição deve ser observado
para o detergente dissolver a sujidade e também para agir na
membrana dos microrganismos inativando muitas formas, e con-
seqüentemente, diminuindo o risco de transmissão de germes
no caso de acidentes, durante a manipulação. Para um contato
direto da solução detergente no interior de materiais tubulares
(catéteres, tubos de aspiração e de oxigenioterapia, etc.), faz-se
necessário o uso de uma seringa para injetar a solução interna-
mente. Para remoção de crostas ou sujidade aderidas utiliza-se
escovas, tomando-se cuidado para não formar ranhuras em de-
terminados materiais que poderão albergar sujidade mais facil-
mente. Após, realizar o enxágüe em água corrente e abundante.
Secar com compressas secas e limpas. A secagem pode ser
feita na parte interna dos materiais com jatos de ar comprimido.
Guardar em local limpo e protegido de poeira ou encaminhar
para desinfecção/esterilização se estiver indicado.
• Detergente enzimático
Modo de uso:
em imersão: preparar a solução em recipiente com água fria ou ligeiramente morna, nunca quente para
evitar a inativação das enzimas. A concentração deve seguir a orientação do fabricante descrita em cada
embalagem, assim como a troca da solução, e o tempo mínimo de contato. Geralmente o tempo mínimo de
ação é de 3 a 5 minutos. Para um contato direto da solução detergente no interior de materiais tubulares, faz-
se necessário o uso de uma seringa para injetar a solução internamente. Após, realizar o enxágüe em água
corrente e abundante. Secar com compressas secas e limpas. A secagem em materiais tubulares pode ser
com jatos de ar comprimido. Guardar em local limpo e protegido de poeira ou encaminhar para desinfecção/
esterilização.
O uso do detergente enzimático está indicado para artigos com maior possibilidade de aderência de
sujidade e com difícil acesso para limpeza. Como exemplo citaremos: tubo endotraqueal, circuito de respira-
dor, sonda nasoentérica, catéteres, instrumental cirúrgico de traumatologia, fibrobroncoscópio, laparoscópio,
etc. A restrição de seu uso deve-se ao seu alto custo. Suas vantagens são: biodegradável, rápida ação, baixa
toxicidade, não corrosividade, não oxidação, excelente ação limpadora dispensando a etapa de fricção mecâ-
nica e aumentando a vida útil dos materiais. As enzimas são elementos biológicos que degradam
específicamente as proteínas, açúcares e gorduras que compõem a matéria orgânica.

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Secagem de material com compressa
• desincrostante em pó ou líquido:
Modo de uso:
em imersão: preparar a solução diluindo conforme orientação do fabricante. Deixar os materiais
imersos por 30 minutos. Utilizar escovas para fricção. Após, realizar o enxágue em água corrente e abun-
dante. Secar com compressas secas e limpas. Guardar em local limpo e protegido de poeira ou encami-
nhar para desinfecção/esterilização se estiver indicado. O desincrostante está indicado para remoção de
crostas em vidros, papagaios, comadres e instrumental cirúrgico. É contra-indicado o uso em plásticos,
látex ou borrachas.
• peróxido de hidrogênio (10 %) – popularmente conhecida com água oxigenada líquida.
Modo de uso:
em superfícies: seu uso está indicado para facilitar a remoção de sangue ressecado, aplicando
puro diretamente sobre a crosta ou injetando em caso de agulha ou catéter. Posteriormente, proceder a
limpeza.

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• lubrificante
Modo de uso: em equipamentos que necessitam de lubrificação diária ou periódica, esta etapa deve
ser realizada após a limpeza, e antes da esterilização. Estes instrumentos são geralmente de uso em
procedimentos cirúrgicos médicos e odontológicos e são articulados, citando-se também micromotores de
uso em odontologia, traumatologia, neurocirurgia, etc... A aplicação do lubrificante deve ser orientada pelo
fabricante.
• desoxidante - também chamado produto anti-ferrugem, são indicados em instrumentos médicos e
odontológicos metálicos, quando apresentam pontos de oxidação (ferrugem) ou alteração da cor original
do metal.
Modo de uso: deve ser aplicado após a limpeza e após seu uso deveremos realizar nova limpeza
para evitar que fique resíduo do produto.
DESINFECÇÃO
É o processo de destruição de microrganismos como bactérias na forma vegetativa (não esporulada),
fungos, vírus e protozoários. Este processo não destrói esporos bacterianos.
A desinfecção pode ser dividida em três níveis de acordo com o espectro de destruição dos
microrganismos:
Desinfecção de alto nível: destrói todas as formas vegetativas de microganismos, inclusive
Mycobacterium tuberculosis, vírus lipídicos e não lipídicos, fungos e uma parte dos esporos. Como exem-
plo: glutaraldeído 2%, peróxido de hidrogênio 3-6%, formaldeído 1-8%, ácido peracético e composto clorado
a 10.000 ppm.
Desinfecção de médio nível: inativa o bacilo da tuberculose, bactérias na forma vegetativa , a
maioria dos vírus e fungos, exceto esporos bacterianos. Exemplo: compostos clorados de 500 a 5000 ppm,
álcool 70%.
Desinfecção de baixo nível: elimina a maioria das bactérias, alguns vírus como o HIV, o da hepa-
tite B e hepatite C, fungos. Não destrói microrganismos resistentes como bacilo da tuberculose e esporos
bacterianos. Como exemplo: compostos fenólicos 0,5-3%, compostos de iodo, quaternário de amônia.

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Material imerso em glutaraldeído. Tampa indicando a validade
Produtos utilizados
• Glutaraldeído 2%: com ativação ou pronto uso, 14 dias.
Modo de uso:
em imersão: colocar a solução ativa em recipiente plástico, com tampa, indicando no recipiente o
prazo de validade. Mergulhar completamente o artigo previamente limpo e seco, por um período mínimo
de 30 minutos. Em artigos tubulares, injetar a solução internamente com seringa. Após o tempo de exposi-
ção, os artigos devem ser enxaguados em água corrente, abundante, até remoção total da viscosidade. Na
desinfecção de aparelhos com fibras óticas como videolaparoscópio está indicado o enxágue com água
estéril em técnica asséptica. Indicado para desinfecção de artigos metálicos, plásticos como de
oxigenioterapia (nebulizador, umidificador e ambú), etc. Não misturar artigos metálicos de composição
diferentes no mesmo ciclo para evitar corrosão eletrolítica. É tóxico e libera vapores devendo o processo
ser realizado em local ventilado. Utilizar sempre óculos de proteção, protetor respitatório com carvão
ativado e luva de borracha grossa. A estocagem deve assegurar a desinfecção dos materiais, devendo ser
embalados em sacos plásticos e guardados em caixas fechadas. Este germicida não está indicado para
desinfecção de superfícies.

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• Cloro e compostos clorados: o composto clorado de uso mais comum é o hipoclorito de sódio.
Por ser volátil, sua troca é indicada a cada 24 horas. A concentração recomendada é de 1% em dez
minutos de contato ou 0,5% com trinta minutos de contato para desinfecção de nível médio.
Modo de uso: a solução deve ser solicitada na concentração indicada. Se for usado alvejante co-
mercial, considerar a concentração de 2% e preparar a solução com uma parte de alvejante e igual parte
de água para obter 1% ou uma parte de alvejante para três de água obtendo 0,5%. Pode-se ainda aplicar
uma fórmula de diluição: C¹ x V ¹ = C² x V², onde C¹ é a concentração disponível, V¹ é o volume desejado,
C² concentração desejada e V² volume disponível.
V¹=C² x V² = 0,5 x 1000 ml = 250ml de cloro para obter um litro de solução a 0,5%.
C¹ 2%
Deve ser colocada em recipiente plástico, fechado, de paredes opacas para evitar a ação da luz
pois é instável. Da mesma forma em artigos tubulares, injetar a solução com seringas no interior dos
artigos. Indicado para artigos que não sejam metálicos devido sua ação corrosiva e oxidante. Utilizar
sempre óculos de proteção, máscara cirúrgica e luva de borracha grossa. A estocagem deve assegurar a
desinfecção dos materiais, devendo ser guardados embalados em sacos plásticos e em caixas fechadas.
• Álcool 70%: fechar o frasco imediatamente após o uso para evitar a volatização.
Modo de uso:
em imersão: colocar em recipiente plástico com tampa. Por ser volátil, sua troca é indicada a cada
24 horas . Seu tempo de contato mínimo é de 10 minutos. Deixar escorrer e secar espontaneamente,
dispensa o enxágüe. Indicado para artigos metálicos como cubas, sensores de respirador mecânico, pla-
cas expansoras de pele, tubetes de anestésicos, extratores de brocas em odontologia etc... Não é indica-
do para materiais de borracha, látex, silicone e acrílico pela sua possibilidade de ressecar e opacificar
estes materiais.
Utilizar sempre óculos de proteção, máscara cirúrgica e luva de borracha grossa. A estocagem deve
assegurar a desinfecção dos materiais, devendo ser guardados em caixas fechadas ou embalados.
em superfícies: aplicá-lo diretamente com compressas, friccionando até sua evaporação repetindo
por mais duas vezes. A superfície deve estar limpa e seca pois é inativado na presença de matéria orgâ-
nica. Indicado para equipamentos como refletores de luz, mesas ginecológicas, mobiliário de atendimento
direto ao paciente, porta-amálgamas na odontologia, turbinas alta-rotação não autoclaváveis, micromotores
de odontologia. Utilizar sempre óculos de proteção, máscara cirúrgica e luva de borracha grossa.
• Ácido Peracético 0,2%: introduzido recentemente no mercado nacional, é caracterizado por uma
rápida ação contra todos os microrganismos, incluindo esporos bacterianos em baixas concentrações.
Sua especial vantagem é sua biodegradabilidade e atoxicidade, além de ser efetivo na presença de maté-
ria orgânica. Tem odor avinagrado. É corrosivo para metais como bronze, cobre, ferro galvanizado e latão,
para tal deve-se ter o cuidado de adicionar solução inibidora de corrosão.

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Secagem de material. Ao lado caixa e sacos plásticos para embalagem
Modo de uso: colocar a solução, após adição do inibidor de corrosão, em recipiente plástico com
tampa, em volume que permita a total imersão dos artigos. O tempo de ação como desinfetante de alta
atividade biocida é de 10 minutos de contato. A solução em uso tem validade por 30 dias. O ácido peracético
pode ter sua concentração monitorada com fita teste específica, semanalmente, e na última semana, pelo
27° dia monitorado diariamente. O material deve ser mergulhado limpo e seco e após 10 minutos retirar e
enxaguar em água corrente. Deixar escorrer e secar com compressa limpa. Guardar o material em local
específico limpo e protegido de poeira.
ESTERILIZAÇÃO
É o processo utilizado para completa destruição de microrganismos, incluindo todas as suas for-
mas, inclusive as esporuladas, com a finalidade de prevenir infecções e contaminações decorrentes de
procedimentos cirúrgicos e invasivos com utilização de artigos críticos.

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A esterilização pode ser realizada por:
Processos químicos: glutaraldeído
formaldeído
ácido peracético
Processos físicos: vapor saturado/ autoclave
calor seco/ estufa
raios gama/ cobalto (indústria)
Processos físico-químicos: óxido de etileno
plasma de peróxido de hidrogênio
vapor de formaldeído
Os processos físicos-químicos são indicados para materiais termossensíveis, porém seu uso fica
restrito para hospitais de maior porte e pelo alto custo de instalação/manutenção muitas vezes estes
serviços são terceirizados.
Esterilização por Processo Químico
Está indicada para artigos críticos e termossensíveis, que são aqueles que não resistem às altas
temperaturas dos processos físicos. Para esterilização química podemos utilizar:
• Formaldeído
• Glutaraldeído
• Ácido Peracético
Embora seja oferecida uma grande gama de produtos para esterilização química apenas dois pro-
dutos contemplam características que asseguram maior praticidade, eficácia e confiabilidade do processo,
segurança ocupacional e custo acessível. Um deles é o ácido peracético que recentemente foi introduzido
no mercado nacional e ainda está sendo pouco usado, mas apresenta como vantagem em relação ao
glutaraldeído sua rápida ação, solubilidade em água, biodegradabilidade, e atoxicidade. O outro produto
químico é o glutaraldeído, há 30 anos reconhecido por sua eficácia, baixo custo e baixo poder corrosivo,
porém exige tempo de contato maior, não é biodegradável e é irritante para as mucosas das vias aéreas
exigindo proteções adicionais. O formaldeído líquido tem sido utilizado para esterilização de dialisadores
em Unidades de Hemodiálise. Seu uso ficou restrito devido seu efeito carcinogênico e necessidade de
tempo de contato prolongado.

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• Glutaraldeído 2%: encontrado no comércio em solução pronta ou podendo ser ativada quando
vendida com bisnaga separada de líquido para ativação. O tempo de ativação, validade da fórmula, pode
ser de 14 ou 28 dias. Optamos pelo uso de glutaraldeído 2%, 14 dias, para garantir maior estabilidade da
concentração da solução. A atividade do germicida depende não só do tempo, mas das condições de uso,
tais como: diluição e contaminação por matéria orgânica. O ph também é variável e os mais ácidos podem
provocar oxidação nos instrumentos metálicos do que os alcalinos. Outras vantagens são: excelentes
propriedades microbicidas, atividade na presença de proteína e ação não destrutiva para borrachas, plás-
ticos ou lentes. As desvantagens são: sua volaticidade, toxicidade e agregação de matéria orgânica crian-
do crosta que impede sua ação uniforme.
Modo de uso: em imersão: a solução pronta ou ativada deve ser colocada em recipiente plástico,
com tampa e em quantidade suficiente para total imersão dos artigos, indicando no recipiente o prazo de
validade. Mergulhar completamente o artigo previamente limpo e seco, por um período de 8 a 10 horas,
conforme indicação do fabricante. Em artigos tubulares, injetar a solução internamente com seringa. Após
o término da exposição, retirar os artigos com pinça ou luva estéril, promovendo um enxágüe em água
esterilizada, até remoção total da viscosidade na superfície do artigo. Secar com compressas estéreis e
acondicionar em invólucro estéril até o uso. Pela dificuldade de processamento da técnica asséptica e
enxágüe abundante com água estéril, além do tempo prolongado de exposição, este método de esteriliza-
ção tem seu uso restrito. Pelo seu efeito tóxico e liberação de vapores deve o processo ser realizado em
local ventilado, caso contrário fica indicado o protetor respiratório com carvão ativado. Utilizar sempre
óculos de proteção, máscara cirúrgica e luva estéril.
• Ácido Peracético 0,2%: introduzido recentemente no mercado nacional, é caracterizado por uma
rápida ação contra todos os microrganismos, incluindo esporos bacterianos em baixas concentrações.
Sua especial vantagem é sua biodegradabilidade e atoxicidade, além de ser efetivo na presença de maté-
ria orgânica. Tem odor forte avinagrado. É corrosivo para metais como bronze, cobre, ferro galvanizado e
latão, para tal deve-se ter o cuidado de adicionar solução inibidora de corrosão.
Modo de uso: colocar a solução, após adição do inibidor de corrosão, em recipiente plástico com
tampa, em volume que permita a total imersão dos artigos. O tempo de ação como esterilizante é de 60
minutos de contato. A solução em uso tem validade por 30 dias. O ácido peracético pode ter sua concen-
tração monitorada com fita teste específica, semanalmente, e na última semana, pelo 27° dia deve ser
monitorado diariamente. O material deve ser mergulhado limpo e seco e após 1hora retirar da solução com
pinça ou luva estéril, promovendo um enxágue em água esterilizada. Deixar escorrer e secar com com-
pressa estéril e acondicionar em invólucro estéril até o uso. Não deixar o material imerso por mais de 1 hora
para evitar a corrosão de partes metálicas dos artigos, mesmo a solução contendo inibidor de corrosão.

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Esterilização por Processos Físicos
A esterilização por processos físicos pode ser através de calor úmido, calor seco ou radiação. A
esterilização por radiação tem sido utilizada em nível industrial, para artigos médicos-hospitalares. Ela
permite uma esterilização a baixa temperatura, mas é um método de alto custo. Para materiais que resis-
tam a altas temperaturas a esterilização por calor é o método de escolha, pois não forma produtos tóxicos,
é seguro e de baixo custo.
• Esterilização por Calor Úmido: o equipamento utilizado é autoclave. É o método de 1ª escolha
tratando-se de esterilização por calor. Esta preferência se justifica por preservar a estrutura dos instru-
mentos metálicos e de corte, por permitir a esterilização de tecidos, vidros e líquidos, desde que observa-
dos diferentes tempos de exposição e invólucros. O mecanismo de ação biocida é feito pela transferência
do calor latente do vapor para os artigos, e este calor age coagulando proteínas celulares e inativando os
microrganismos. Os artigos termossensíveis não devem sofrer autoclavagem, pois a temperatura mínima
do processo é de 121º C, bem como os óleos que não permitem a penetração do vapor.
Etapas para processamento:
Invólucros: após limpeza, secagem e separação, os artigos deverão ser acondicionados para se-
rem submetidos ao ciclo de esterilização. Os instrumentos articulados, tipo tesoura, porta-agulha, devem
ser embalados abertos no interior do pacote. Como invólucros para este processo, existem: papel grau
cirúrgico, filme plástico de polipropileno, algodão cru duplo com 56 fios, papel crepado, caixas metálicas
forradas internamente com campos simples e com orifícios para permitir a entrada do vapor. Utilizando-se
caixas metálicas com orifícios, os artigos contidos no interior devem ser utilizados prontamente, pois os
orifícios promovem a recontaminação se estocados. Se a caixa metálica for sem orifícios, deverá ser
esterilizada com a tampa acondicionada separada da caixa, e somente fechá-la após o resfriamento. Em
nossa rede ambulatorial, por algum tempo aceitaremos o uso de papel Kraft, embora a literatura não o
recomende mais devido sua frágil barreira bacteriana.
Os invólucros sem visor transparente deverão ser identificados quanto ao conteúdo, e todos deve-
rão ter escrito a data de validade da esterilização. Todas as embalagens deverão portar um pedaço de fita
de indicação química externa para diferenciar e certificar que os pacotes passaram pelo processo.
O invólucro de papel grau cirúrgico com filme de poliamida e plásticos podem vir em forma de
envelopes prontos ou rolos de diferentes tamanhos e larguras e já vem com indicadores químicos. Se
utilizados em rolo, deverão ser selados a quente com seladoras próprias.
Os invólucros de papel crepado, papel kraft ou tecido deverão obedecer a um método de dobradura
para possibilitar abertura asséptica do pacote.

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Tipos de invólucros para autoclave
Colocação da carga na autoclave: os artigos embalados em papel, dos diferentes tipos, e artigos
embalados em tecido não podem ter contato entre si, pois retém umidade. Se tiverem de ser colocados na
mesma carga, devem ser colocados em prateleiras diferentes da autoclave. Quanto a posição na pratelei-
ra, os invólucros devem ficar dispostos no sentido vertical, e nunca camada sobre camada na mesma
prateleira, para permitir a exaustão do ar e a circulação do vapor no interior de cada pacote. As cargas de
tecidos (gazes e campos) devem ser processados em cargas diferentes dos metais, caso contrário os
têxteis devem ficar na prateleira superior para facilitar a penetração do calor. Os pacotes não podem
encostar nas paredes internas da câmara, assim como a carga não pode ultrapassar 70% da capacidade
interna. Se a caixa metálica for sem orifícios, deverá ser esterilizada com a tampa disposta separada da
caixa, e somente fechá-la após o resfriamento, onde deverá ser lacrada com fita crepe. A fita indicadora
química de processo deverá ser colocada em todos os pacotes ou caixas em local visível, em pequenos
pedaços.

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Ciclo da esterilização: consiste em quatro fases: retirada do ar e entrada do vapor, esterilização,
secagem e admissão de ar filtrado para restauração da pressão interna. Os equipamentos tem diferentes
formas de programação de ciclos, quanto a tempo de exposição, utilização de água destilada em diferen-
tes quantidades portanto, devem ser seguidas as orientações do fabricante.
Qualificação do processo: tem o objetivo de validar a eficácia do processo de esterilização. Exis-
tem vários meios de testar a qualidade da esterilização por autoclave. Os indicadores químicos podem ser
internos ou externos. Os indicadores químicos internos avaliam os parâmetros vapor, temperatura e pres-
são. São fitas que reagem quimicamente alterando sua cor e são colocadas no interior de cada pacote, e
conferidas na abertura do pacote. Os indicadores químicos externos, na forma de fita adesiva, são utiliza-
dos apenas para diferenciar os pacotes que passaram pelo processo de esterilização daqueles que ainda
não passaram, através da mudança da cor da fita por sensibilidade a temperatura. Este indicador não
avalia a qualidade da esterilização, apenas a passagem pelo processo.
Disposição da carga dentro da autoclave

40
40
40
40
40
Identificação do material estocado
Os indicadores biológicos são utilizados para testar a eficácia do processo quanto a destruição dos
microganismos, através da utilização de tubetes com fitas impregnadas de Bacillus stearothermophillus,
colocados dentro de alguns pacotes-teste (identificados assim) em locais estratégicos da autoclave con-
forme seu tamanho. Em autoclaves pequenas, pode-se utilizar apenas em um pacote próximo a área de
exaustão. Em autoclaves grandes distribui-se em três pacotes colocados na porta, no meio e no fundo. Um
tubete deve ser reservado como controle da presença da bactéria. Após o ciclo, os tubetes são incubados,
e o processo foi eficaz se as colônias de bacillus não apresentarem crescimento, mas apenas no tubete
controle. Se o resultado for positivo, com crescimento bacteriano, toda a carga daquele equipamento
deverá ser bloqueada e a autoclave deverá ser checada por um técnico. No retorno da manutenção,
deverá ser realizado novo teste biológico. A periodicidade ideal é de uma vez por semana.
Estocagem e Prazo de Validade: é bastante variável e depende do tipo de invólucro, da eficiência
do empacotamento, do local de estocagem quanto a umidade e se são prateleiras abertas ou fechadas
que indicará a circulação de poeira. Entretanto, para maior segurança, recomenda-se a estocagem dos
pacotes em armários fechados ou caixas para maior proteção. O manuseio externo destas embalagens
deve ser com as mãos limpas. A abertura de cada pacote ou caixa esterilizada deve ser feita com técnica
asséptica utilizando luva esterilizada ou pinça estéril exclusiva para este fim. Considera-se contaminada
toda a embalagem rompida ou manchada. Para papel kraft, manteremos a rotina de 7 dias de estocagem
e para tecido, 15 dias. Para papel crepado, 2 meses em armário fechado. Para papel grau cirúrgico ou
polietileno 6 meses em armário fechado. Semanalmente o estoque deve ser revisado quanto ao prazo de
validade, encaminhando para reprocessamento os pacotes vencidos. Ao estocar os pacotes, deve-se
observar para os que estiverem próximo ao vencimento fiquem mais na frente dos recém esterilizados,
seguindo uma ordem pela data de validade.

41
Kits embalados em papel alumínio e
após, em caixa metálica
• Esterilização por Calor Seco: o equipamento utilizado é o Forno de Pasteur, usualmente conhe-
cido como estufa. A esterilização é gerada através do aquecimento e irradiação do calor, que é menos
penetrante e uniforme que o calor úmido. Desta forma requer um tempo de exposição mais prolongado e
maiores temperaturas, sendo inadequado para tecidos, plásticos, borrachas e papel. Este processo é mais
indicado para vidros, metais, pós (talco), ceras e líquidos não aquosos ( vaselina, parafina e bases de
pomadas).
Etapas para processamento
Invólucros: após limpeza, secagem e separação, os artigos deverão ser acondicionados para se-
rem submetidos ao ciclo de esterilização. Os instrumentos articulados, tipo tesoura, porta-agulha, devem
ser acondicionados abertos no interior da caixa metálica. Como invólucros para este processo, existem:
caixas metálicas, vidros temperados (tubo de ensaio, placas de Petry) e lâminas de papel alumínio. Utili-
zando-se caixas metálicas, estas devem ser fechadas com tampa. Os artigos contidos no interior das
caixas devem ter um limite de volume que proporcione a circulação do calor. Preferentemente as caixas
devem conter kits de instrumentos a serem usados integralmente em cada procedimento. Se utilizadas
caixas maiores, contendo grande volume de artigos, recomenda-se envolver cada instrumento ou kits em
papel alumínio para reduzir a possibilidade de contaminação na retirada dos instrumentos. Neste momen-
to deve-se ter o cuidado de evitar o rompimento do papel alumínio. Os pós e líquidos devem ser colocados
em vidros fechados com alumínio. Todos os invólucros deverão conter um pedaço de fita indicadora quími-
ca do processo de esterilização, bem como a indicação de validade e o nome do kit ou instrumento. As
caixas metálicas devem ser lacradas com fita adesiva após a exposição ao calor para evitar a queima da fita.

42
42
42
42
42
Disposição do material dentro da estufa mostrando
o termômetro de bulbo
Colocação da carga na estufa: os principais pontos a observar são a não sobrecarga de materiais,
deixando espaço suficiente entre eles para haver uma adequada circulação de calor. Não é permitido o
empilhamento de caixas em cada prateleira da estufa.
Ciclo da esterilização: o ciclo de esterilização inclui três fases: fase1 – aquecimento da estufa à
temperatura de esterilização pré-estabelecida; fase 2 – esterilização da carga, incluindo tempo de pene-
tração do calor e tempo de exposição; fase 3 – resfriamento da carga. A estufa deve ser ligada antes do
momento escolhido para a esterilização para ter tempo de chegar na temperatura desejada do ciclo. As
temperaturas variam entre 140º e 180º C. Quanto menor a temperatura, maior será o tempo de exposição.
As temperaturas mais elevadas são indicadas para instrumentos metálicos. É importante observar que a
contagem do tempo só será feita, a partir do momento em que atingir a temperatura indicada no termôme-
tro de bulbo. O termostato original da estufa é usado apenas para a escolha da temperatura, mas devemos
nos basear na observação de um termômetro de bulbo, instalado no orifício superior da estufa, que indica-
rá o alcance da temperatura escolhida no termostato. Iniciada a contagem do ciclo de esterilização, a
estufa não poderá mais ser aberta. Para garantir isto, recomenda-se lacrar a porta com fita adesiva que já
poderá conter o horário de conclusão do ciclo. Após o término do ciclo a estufa deve ser desligada para o
resfriamento gradual e lento da carga. A retirada da carga ainda quente para uma superfície fria, pode
ocasionar a condensação de vapor e retenção de umidade. Para retirada de materias após o ciclo, reco-
menda-se uso de pinças próprias para remoção de bandejas, ou luvas especias resistentes a calor.

43
Qualificação do processo: tem o objetivo de validar a eficácia do processo de esterilização. Os
indicadores químicos externos, na forma de fita adesiva, são utilizados apenas para diferenciar os pacotes
que passaram pelo processo de esterilização daqueles que ainda não passaram, através da mudança da
cor da fita. Este indicador não avalia a qualidade da esterilização.
Os indicadores biológicos são utilizados para testar a eficácia do processo quanto a destruição dos
microganismos, através da utilização de tubetes com fitas impregnadas de Bacillus subtilis, colocados em
locais estratégicos da estufa conforme seu tamanho, sendo indispensável sua colocação no centro da
estufa e próximo a porta, considerados pontos críticos. Um tubete deve ser reservado como controle da
presença da bactéria. Após o ciclo, os tubetes são incubados em laboratório, e o processo foi eficaz se as
colônias de bacillus não apresentarem crescimento, mas apenas no tubete controle. Se o resultado for
positivo, com crescimento bacteriano, toda a carga daquele equipamento deverá ser bloqueada e a estufa
deverá ser revisada por um técnico. No retorno da manutenção, deverá ser realizado novo teste biológico.
A periodicidade ideal é de uma vez por semana.
Tubetes com testes biológicos para autoclave e estufa
Temperatura x tempo de ciclos recomendados em estufa
Temperatura Tempo
180 ºC 30 min
170 ºC 60 min *
160 ºC 2 horas *
150 ºC 2 h 30 min
140 ºC 3 horas **
121 ºC 6 horas **
* mais indicados para instrumentais metálicos
** mais indicados para gaze, vaselina, gaze vaselinada

44
44
44
44
44
Estocagem e Prazo de Validade: é bastante variável e depende do local de estocagem quanto a
umidade e se são prateleiras abertas ou fechadas que indicará a circulação de poeira. Entretanto, para
maior segurança, recomenda-se a estocagem em armários fechados ou caixas plásticas com tampa. O
manuseio interno das caixas metálicas para retirada do material deve ser com técnica asséptica e conside-
ra-se contaminada toda a embalagem de papel alumínio rompida. Na utilização de grande número de
instrumentos na mesma caixa metálica, se alguns artigos foram retirados para uso recomenda-se o
reprocessamento, no final do turno, de toda a caixa. Se não utilizada, a caixa lacrada deve ser reprocessada
em 30 dias.

45
LIMPEZA, DESINFECÇÃO OU ESTERILIZAÇÃO DE ARTIGOS HOSPITALARES
O QUE QUANDO, O QUÊ COM O QUE COMO
Agulhas de acumpuntura
após o uso, limpar
após limpeza, desinfetar
água e detergente
estufa ou autoclave
se de uso único,
descartar em caixa
apropriada
Almotolias álcool
glicerinado
semanalmente, limpeza água e detergente
desprezar o
conteúdo anterior
Ambú, traquéia
quando sujo, limpeza
depois de limpo
e seco, desinfetar
detergente enzimático ou
detergente neutro
glutaraldeído 2%
usar escovas
seguir cuidados
específicos do
glutaraldeído
Anel medidor de
diafragma
após o uso
água e detergente
hipoclorito 1 %
no hipoclorito 1%
por 10 min
Aparelho tricotomia
após o uso, limpar
depois de limpo,
esterilizar ou desinfetar
água e detergente
autoclave ou
10 min no álcool 70%
descartar a lâmina
Balcão posto
medicamentos e
administrativo
2 vezes ao dia, desinfetar
diariamente, limpar
álcool a 70%
saponáceo e esponja de aço
limpar quando sujo
arear para remover
manchas
Bicos de mamadeiras,
esgotadeira, protetor
mamilar
após o uso
depois de limpo e seco,
desinfetar
água e detergente
hipoclorito 1 %
hipoclorito por 10
min
enxaguar bem
depois do hipoclorito
após o uso água e detergente friccionar superfície

46
46
46
46
46
Comadre, papagaio
após o uso, limpar
semanalmente todos em
uso no setor
água quente e detergente e
após secagem friccionar
álcool 70%
desincrostante ( p/ matéria
orgânica aderida)
usar escova longa e
esponja de aço fino
desinfetar c/ álcool
após a limpeza
Copos medicação
descartáveis
após o uso descartar
Cuba, bacia, bandeja
após o uso, limpar
depois de limpo,
desinfetar
água e detergente
após a secagem friccionar
álcool 70% na superfície
usar esponja de aço
fino
Espéculos ginecológicos
após o uso, limpar
depois de limpo,
esterilizar
água e detergente
estufa ou autoclave
observar cuidados
de esterilização
Fibrobroncoscópio
após o uso, limpar
detergente enzimático
glutaraldeído 2%
ejetar internamente
as soluções com
seringa
Frasco de vidro – para
Sonda Nasogástrica
após o uso, limpar água e detergente ou
desincrostante
usar escova longa
Frasco de vidro – para
aspiração vias aéreas
após o uso
em internação, a cada 12
horas
água e detergente ou
desincrostante
não é necessário
esterilizar
Frasco plástico p/
soluções (álcool, iodofor)
descartável
semanalmente descartar desprezar solução
restante
Frasco de vidro p/
soluções (álcool,iodofor)
semanalmente água e detergente desprezar solução
restante
encaminhar para
esterilização
Furadeira
após o uso, limpar
após limpeza, esterilizar
aplicar álcool a 70% na
superfície, embalar com grau
cirúrgico e esterilizar
esterilizar em ETO
ou com pastilha de
formaldeído
úmidecida em estufa
a baixa temperatura
Gazes secas
embalar e rotular esterilizar em
autoclave
Gaze vaselinada em caixa metálica esterilizar em estufa

47
Instrumental
Pinças, tesouras, cabos
de bisturí, etc.
após o uso, limpar
água e detergente neutro deixar de molho por
30min (pinças
abertas); limpar e
encaminhar para
esterilização.
Lâmina de barbear
após o uso descartar descartar em caixa
apropriada
Laringoscópio
- lâmina
- cabo
após o uso, limpar e
desinfetar
após o uso, desinfetar
água e detergente, após
álcool a 70%
álcool a 70%
friccionar superfície
Máscara de Venturi
após o uso
detergente neutro ou
enzimático
glutaraldeído 2%
limpar, secar e
seguir cuidados
específicos do
glutaraldeído
Mesa de refeição
3 vezes ao dia, limpar e
desinfetar
água e detergente, após
álcool 70%
friccionar,
passar pano com
álcool
Nebulizador
após o uso, limpar
água e detergente
glutaraldeído 2% ou
hipoclorito 1 %
desinfetar com
hipoclorito 1 % 10
minutos
Otoscópio
- espéculo
- cabo
após o uso
após o uso
água e detergente
glutaraldeído 2%
álcool a 70%
escovar
seguir cuidados
específicos do
glutaraldeído 2%
aplicar com pano
Pinça auxiliar e tesoura
em vidros
a cada 12h, lavar
após, esterilizar
água e detergente
autoclave ou estufa
encaminhar o
conjunto p/
esterilização
Pente
após o uso
água e detergente
álcool a 70%
friccionar o álcool
após limpeza e
secagem

48
48
48
48
48
Talas, calhas, goteiras
após o uso
depois de limpo
água e detergente
álcool a 70% friccionar
Termômetros,
estetoscópio
após o uso álcool a 70% friccionar na
superfície
Tubo endotraqueal após o uso descartar
Tubos de Silicone (T.S.) -
O2 ou Ar comprimido
T.S. - aspiração
T.S. - dren. Tórax
a cada 24h, em
internação
após o uso, em
ambulatórios ou a cada
12 h se pouco para
trocas
após o uso, em
ambulatórios
a cada 12 horas, em
internação
após o uso
água e detergente
água e detergente
água e detergente
água e detergente
água e detergente
usar internamente
bolas de algodão
com detergente e
jato de água ou
detergente
enzimático. Todos
os silicones devem
ser encaminhados
para esterilização à
vapor.
Umidificador de O2
após o uso, limpar
água e detergente
glutaraldeído 2%
escovar
internamente
Válvulas: vácuo, O2 e Ar
comprimido
após o uso álcool a 70% friccionar
Vários: Equipamentos
específicos de
especialidades:
nos manípulos e áreas de
contato direto
antes e após o uso
álcool 70%
película pvc ou outra barreira
friccionar
descartar após o
uso

49
LIMPEZA, DESINFECÇÃO OU ESTERILIZAÇÃO DE ARTIGOS
ODONTOLÓGICOS EQUIPAMENTOS E SUPERFÍCIES DE USO DIRETO
O QUE QUANDO COM O QUE COMO
Amalgamador
antes e após o uso
desinfectar
álcool 70%
película de PVC
cobrir com PVC
áreas de manipulação
Bancadas
2 x dia ou após turno de
trabalho limpar
após limpeza, desinfectar
água e detergente
álcool 70%
usar esponja friccionar
Cadeira Odontológica
antes e após o uso
desinfetar
no final do turno limpar,
desinfetar
água e detergente
álcool 70%
hipoclorito 1 %
película de PVC
água com detergente
friccionar superfícies
metálicas, cobrir com
PVC
friccionar superfícies não
metálicas
cobrir com PVC o
encosto, as alças e os
botões
Cuspideira
após o uso, limpar e
desinfetar
água e detergente
álcool 70%
hipoclorito 1%
metálicas
metálicas
Equipamento RX
antes e após o uso
desinfetar, cobrir com
barreiras
água e detergente
álcool 70%
película de PVC
friccionar superfície, secar
cobrir com PVC
Equipo
antes e após o uso
desinfetar, cobrir com
barreiras
água e detergente
álcool 70%
película de PVC
friccionar superfície, secar
cobrir com PVC

50
50
50
50
50
LIMPEZA, DESINFECÇÃO OU ESTERILIZAÇÃO DE ARTIGOS
ODONTOLÓGICOS EQUIPAMENTOS E SUPERFÍCIES DE USO DIRETO
Fotopolimerizador
antes e após o uso
desinfetar
álcool 70%
película de PVC
cobrir com PVC áreas de
manipulação
Mocho
2 x dia ou após turno de
trabalho
água e detergente
álcool 70%
hipoclorito 1 %
metálicas
metálicas
Pontas Alta e Baixa
Rotação
autoclaváveis
Antes e aos o uso
esterilizar
autoclave encaminhar para
esterilização
Pontas Alta e Baixa
Rotação não
autoclaváveis
antes e após o uso
desinfetar
álcool 70%
película de PVC
cobrir com PVC
Refletor
antes e após o uso
desinfetar
álcool 70%
película de PVC
cobrir com PVC as alças
e o botão
Seringa Tríplice
-botões e corpo
antes e após o uso
desinfetar
álcool 70%
película de PVC
cobrir com PVC
Seringa Tríplice
-ponteira
antes e após o uso
desinfetar
álcool 70%
película de PVC ou
canudos grossos ou
ponteiras prontas
cobrir com PVC ou
revestir com canudo
ultrapassando o limite da
ponteira
Vários:
microcomputador,
câmaras intra orais e
outros – nos
manípulos e áreas de
contato direto
antes e após o uso
desinfetar
álcool 70%
película de PVC
friccionar
descartar
esterilizar

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ARTIGOS DIVERSOS
Alicate Perfurador
de Borracha de
Isolamento
Absoluto
antes e após o uso,
desinfetar
álcool 70%
película de PVC
cobrir com PVC
Arco Porta-Dique
- plástico
após o uso limpar
enzimático
glutaraldeído 2%
enxaguar em água
corrente abundante
desinfecção no produto
indicado em imersão 30
minutos
passar em álcool etílico e
secar p/ embalar e
armazenar
Bandejas, Cubas,
Caixas e similares:
- metálicas
após o uso limpar
água e detergente neutro
autoclave ou estufa
deixar em imersão 30 min
limpar -friccionar com
esponja/escova e
encaminhar conjuntos para
esterilização
Bandejas, Cubas,
Caixas e similares:
plásticas ou similares
após o uso limpar
enzimático
autoclave ou estufa
esponja/escova
encaminhar conjunto para
esterilização
Instrumentais
Metálicos de todas as
Especialidades
após o uso limpar
água e detergente neutro
autoclave ou estufa
deixar em imersão 30 min
(pinças abertas);
esponja/escova e
encaminhar conjunto para
esterilização
Pinça Portagrampo de
Isolamento Absoluto
antes e após o uso
desinfetar
cobrir com barreira
álcool 70%
película de PVC
cobrir com PVC
Placas de Vidro,
Seringas, Frascos de
Dappen
após o uso limpar
enzimático
glutaraldeído 2%
enxaguar em água
corrente abundante
minutos
secar p/ embalar e
armazenar

52
52
52
52
52
CIRURGIA ODONTOLÓGICA
DENTÍSTICA RESTAURADORA
Agulhas de Sutura após o uso descartar
Brocas de Cirurgia após o uso descartar
Lâmina de bisturi após o uso descartar
Brocas
após o uso limpar
após desgaste ou
cirurgias
enzimático
autoclave
imersão 30 min, friccionar,
secar
esterilizar embalando entre
gases
descartar
Espátulas Plásticas
para Resina
após o uso limpar
enzimático
glutaraldeído 2%
Imersão 30 min, friccionar,
secar
esterilizar em imersão 10
horas
secar p/ embalar e
armazenar
Pontas de Borracha
Abrasiva
após o uso limpar
após desgaste
enzimático
glutaraldeído 2%
secar
desinfetar em imersão 10
horas
secar p/ embalar e
armazenar
descartar
Porta-Amálgama:
- metálico
- plástico
antes e após o uso água e detergente
álcool 70%
friccionar, secar
friccionar
cobrir com PVC
esterilizar
esterilizar

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PERIODONTIA
Taças de Borracha
Escovas de Polimento
após o uso, limpar
- detergente neutro ou
enzimático
- glutaraldeído 2%
secar
horas
secar p/ embalar e armazenar
esterilizar esterilizar
ENDODONTIA
Cones de Papel após remoção da caixa descartar
Limas tipo Kerr ou
similar/ Alargadores /
Extirpa-Nervos / Lentulos
após o uso, limpar
enzimático
autoclave para
termorresistentes
secar
encamimhar para
esterilização
Limitadores de limas e
outros
- borracha
após o uso, limpar
enzimático
glutaraldeído 2%
secar
horas
secar p/ embalar e
armazenar
Régua para
condutometria (metal)
após o uso, limpar
detergente. neutro ou
enzimático
autoclave
secar
encaminhar para
esterilização
encaminhar

54
54
54
54
54
RADIOLOGIA
PRÓTESE
Moldeiras Plásticas
após o uso, limpar
enzimático
glutaraldeído 2%
Imersão 30 min, friccionar,
secar
horas
secar p/ embalar e
armazenar
Moldagens Protéticas =
Moldeira +
Mercaptana/Silicona/Polié
ster/Gesso/Hidrocolóide
Reversível Ou
Irreversível)
após o uso, lavar
após lavagem, desinfetar
água corrente
hipoclorito de sódio 1%
enxaguar em água corrente
abundante
minutos
enviar ao protético em saco
plástico
Seringa p/ Inserção de
Material de Moldagem:
após o uso, limpeza
enzimático
hipoclorito de sódio 1%
enxaguar em água corrente
abundante
minutos
secar p/ embalar e
armazenar

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FISIOTERAPIA
Vibrador após o uso álcool 70% esfregar com pano
Flutter
após o uso, limpar
detergente
glutaraldeído 2%
imersão
imersão
DHD
após o uso, limpar
detergente
glutaraldeído 2%
imersão
imersão
Respiron
após o uso, limpar
detergente
glutaraldeído 2%
imersão
imersão
Manovacuômetro
Bucal e cânula
Manômetro
após o uso, limpar
após o uso, desinfecção
detergente
glutaraldeído 2%
álcool 70%
imersão
imersão
fricção com pano
TENS
Eletrodos
Aparelho
após o uso, limpar
após o uso, desinfecção
detergente
glutaraldeído 2%
álcool 70%
imersão
imersão conforme técnica
fricção na superfície
Peak Flow após o uso, limpar
detergente
glutaraldeído 2%
imersão
imersão
Válvula Spring Loadead
após o uso, limpar
detergente
glutaraldeído 2%
imersão
imersão
Máscara facial
após o uso, limpar
detergente
glutaraldeído 2%
imersão
imersão
Ultrasom
cabeçote
após o uso, desinfetar álcool 70% fricção com pano

56
56
56
56
56

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O
objetivo é remover a sujidade da lesão ou da pele e preparar o ferimento para a sutura ou
curativo. Para tanto, faz-se uma limpeza mecânica da ferida com irrigação de solução salina
sob pressão de forma a remover corpos estranhos e grande parte de bactérias superficiais.
Se houver presença de tecido desvitalizado e corpos estranhos aderidos que não saíram com o jato de
soro fisiológico, estes são removidos com auxílio de pinças, tesouras ou lâminas. Sangue coagulado na
pele adjacente ao ferimento pode ser removido com água oxigenada. Dentro do ferimento, remover cirur-
gicamente. Evita-se o contato da água oxigenada no tecido aberto devido seu efeito lesivo da oxigenação
sobre células expostas.
Sabões, detergentes e antissépticos cutâneos estão contra-indicados sobre tecidos sub-epiteliais
uma vez que são irritantes para os tecidos, destruindo células vivas e criando sim, tecido morto que servirá
de substrato para crescimento bacteriano. Na verdade sabões e antissépticos nos tecidos aumentam o
potencial de infecção se usados diretamente na ferida. Estes podem ser usados para limpar a pele íntegra
em volta da ferida sendo removidos prontamente com solução salina estéril. Se o ferimento aguarda sutu-
ra, este deve ficar protegido com gaze ou compressa estéril e solução salina isotônica até o tratamento
cirúrgico definitivo.
C
C
C
C
CAPÍTULO 6
APÍTULO 6
APÍTULO 6
APÍTULO 6
APÍTULO 6
PREP
PREP
PREP
PREP
PREPARO DO FERIMENTO
ARO DO FERIMENTO
ARO DO FERIMENTO
ARO DO FERIMENTO
ARO DO FERIMENTO, PELE
, PELE
, PELE
, PELE
, PELE
OU MUCOS
OU MUCOS
OU MUCOS
OU MUCOS
OU MUCOSA DO P
A DO P
A DO P
A DO P
A DO PA
A
A
A
ACIENTE
CIENTE
CIENTE
CIENTE
CIENTE
57

58
58
58
58
58
Quanto ao preparo da pele ou mucosa íntegra para procedimentos invasivos ou cirúrgicos indica-se
o uso de antissépticos. Para mucosas usamos antissépticos em veículos aquosos e não os alcoólicos. O
antisséptico pode ter associado um degermante de forma que em um único processo se tem duas ações:
a limpeza e a antissepsia com destruição de germes da pele ou mucosa. Os três antissépticos com melho-
res resultados são o álcool 70%, a clorexidina e o PVPI (polivinilpirrolidona-Iodo).
Ferimento lavado com soro fisiológico. Gaze aplicada na pele adjacente

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ANTISSÉPTICOS INDICAÇÃO
Álcool 70%
• Antissepsia de pele antes de administrar medicamentos e soluções
parenterais (IV, IM, SC). Aplicar por 30 segundos.
• Antissepsia de pele antes de puncionar acesso venoso central ou
arterial periférico. Aplicar por um minuto na pele.
• Antissepsia de pele antes de passar drenos ou outras punções
diagnósticas. Aplicar por um minuto na pele.
Álcool glicerinado 2%
• Exclusivamente para antissepsia das mãos após a lavagem das mãos
ou como substituto da lavagem.
Iodofor aquoso 2%
• Antissepsia de mucosa antes de procedimentos invasivos
• Antissepsia de pele adjacente de ferimentos ou em áreas lesadas
antes de punções ou outros procedimentos invasivos
Clorexidina degermante 2%
• Antissepsia e degermação como preparo do campo cirúrgico; em pele
ou áreas adjacentes de ferimentos ou mucosas, antes de procedimentos
cirúrgicos ou invasivos. Aplicar por três minutos e enxaguar com soro
fisiológico, secar com compressa estéril.
• Banhos de pacientes queimados, banho de pacientes com infecções
por bactérias multirresistentes
• Antissepsia das mãos da equipe cirúrgica no bloco cirúrgico; da equipe
de unidades críticas ou da equipe de unidades de internação na vigência
de surto de infecção.
Clorexidina alcoólica 0,5%
• Antissepsia de pele antes de puncionar acesso venoso central ou
arterial periférico. Aplicar por um minuto na pele.
• Antissepsia de pele antes de passar drenos ou outras punções
diagnósticas. Aplicar por um minuto na pele.
Clorexidina 0,12% • Antissepsia de mucosa oral para uso dentário

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C
om o surgimento da AIDS vem-se observando, tanto nos países desenvolvidos como nos em
desenvolvimento, um número crescente de casos notificados de tuberculose em pessoas
infectados pelo HIV (em POA, 24% dos tuberculosos tem HIV+), constituindo um sério proble-
ma de saúde pública, aumentando a morbidade e mortalidade pela tuberculose em muitos países.
O homem é o principal hospedeiro do Mycobacterium tuberculosis, agente etiológico da tuberculo-
se. A fonte de infecção é o indivíduo com tuberculose pulmonar que ao falar, espirrar e, principalmente,
tossir, elimina os bacilos para o exterior. As gotículas mais pesadas se depositam rapidamente até um
metro), sem risco de transmissão, e as mais leves se ressecam e permanecem em suspensão no ar por
longo período de tempo e percorrendo longas distâncias. Somente os núcleos secos de gotículas (Núcleo
de Wells), com diâmetro inferior a 5µm com 1 a 2 bacilos em suspensão podem atingir o alvéolo pulmonar.
Gotículas médias com o bacilo retidas na mucosa do trato respiratório superior, removidas pelo mecanis-
mo muco-ciliar, são inativados pelo suco gástrico. Depois de vencer as defesas da árvore brônquica, no
alvéolo o bacilo se instala e multiplica-se, originando-se o foco primário, primo-infecção, de aspecto caracte-
rístico (complexo de Gohn), reconhecido radiológicamente. Cerca de 95% da população infectada consegue
bloquear o avanço do processo que irá depender basicamente da imunidade do infectado. O foco inicial pode
resultar em doença pulmonar (85%) ou em outro órgão (15%) se os bacilos forem disseminados por via
hematogênica (mais comum na infância e indivíduos com HIV), porém somente na forma pulmonar que os
bacilos são eliminados pelo ar. Dos primo-infectados, 5% adoecerão tardiamente por recrudescimento do foco
C
C
C
C
CAPÍTULO 7
APÍTULO 7
APÍTULO 7
APÍTULO 7
APÍTULO 7
TUBER
TUBER
TUBER
TUBER
TUBERCULOSE – CUID
CULOSE – CUID
CULOSE – CUID
CULOSE – CUID
CULOSE – CUIDADOS DE
ADOS DE
ADOS DE
ADOS DE
ADOS DE
PREVENÇÃO D
PREVENÇÃO D
PREVENÇÃO D
PREVENÇÃO D
PREVENÇÃO DA TRANSMIS
A TRANSMIS
A TRANSMIS
A TRANSMIS
A TRANSMISSÃO
SÃO
SÃO
SÃO
SÃO
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já existente (tuberculose pós-primária). A probabilidade de adoecer numa primo-infecção dependerá da viru-
lência do bacilo, das condições sócio econômicas do infectado, sua imunidade, doenças imunossupressoras,
desnutrição, stress, silicose, diabetes e uso de drogas. A imunidade humoral adquirida (BCG) para tuberculose
tem pouca importância, mas garante maior proteção para meningite tuberculosa e diminui a incidência de
formas graves de tuberculose. A maior imunidade é mediada pelo sistema imunológico celular (linfócitos e
macrófagos) afetada por doenças imunossupressoras e hábitos desregrados.
A doença se apresenta com o comprometimento do estado geral, febre baixa vespertina, sudorese
noturna, inapetência, emagrecimento, dor torácica, tosse produtiva e por vezes escarro hemoptóico (TB
pulmonar). Em crianças o comprometimento ganglionar mediastínico e cervical é comum. Tem um período
de incubação de 4 a 12 semanas e em torno de 12 meses após a infecção inicial, aparece a doença.
Para o diagnóstico, além da história clínica, faz-se a baciloscopia direta do escarro ou outras secre-
ções corporais (pesquisa do BAAR), exames radiológicos, prova tuberculínica em não vacinados e exa-
mes anátomo-patológico, bioquímico, sorológico e molecular. A cultura está indicada para suspeitos de
tuberculose pulmonar persistentemente negativos ao exame direto.
O propósito do Programa de Controle da Tuberculose é reduzir a transmissão do bacilo através das
ações de diagnóstico e tratamento que são as principais medidas de controle. Com o esquema terapêutico
a transmissão é reduzida, gradativamente, a níveis insignificantes ao fim de poucos dias ou semanas. É
praticamente curável em 100% dos casos.
Diversos surtos hospitalares de tuberculose foram reportados nos últimos anos, sendo acometidos
tanto pacientes como profissionais de saúde, muitos com cepas resistentes aos diversos esquemas
terapêuticos. O risco de transmissão nosocomial é maior em serviços referência para tuberculose e AIDS.
Pacientes com tuberculose pulmonar e laríngea tem maior probabilidade de transmissão. Certos procedi-
mentos como broncoscopia, entubação endotraqueal, irrigação de abscessos abertos, indução de escarro
e técnicas laboratoriais de pesquisa do bacilo aumentam o potencial de transmissão. Falhas no diagnós-
tico, no isolamento e manejo deste pacientes são determinantes para a transmissão nosocomial. Para
tanto, a identificação precoce e tratamento adequado, medidas administrativas e de engenharia ambiental
devem ser priorizadas a fim de minimizarmos o risco de transmissão.
Paciente suspeito de TB pulmonar bacilífera é aquele com tosse produtiva por três semanas ou
mais. Deve se solicitar um RX tórax e prosseguir a investigação com o exame bacterioscópico do escarro.
Caso confirmado (BAAR +), mantém-se as precauções de isolamento e inicia-se o tratamento. Em caso
negativo suspende-se as precauções e mantém-se a investigação (mais dois escarros para bacterioscopia).
A exclusão diagnóstica de TB pulmonar bacilífera não significa exclusão de TB.
Dentro das medidas administrativas preconizadas, está a criação de uma comissão específica para
controle da tuberculose, treinamento de profissionais de saúde, adequação do número de leitos de isola-
mento, inclusive no atendimento de emergência, controle de saúde dos profissionais incluindo inquérito
tuberculínico.

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O controle ambiental tem o objetivo de reduzir a concentração das partículas infectantes do recinto
através de um sistema de ventilação e pressão negativa em relação às áreas adjacentes, com 6 a 12
trocas do volume de ar por hora. Este ar deve ser dirigido para o exterior da unidade ou recirculado, desde
que devidamente filtrado (filtro HEPA). Este sistema está indicado para quartos de isolamento, salas de
pronto atendimento, laboratório de micobactéria, sala de necrópsia, sala de broncoscopia ou indução de
escarro. Se isso não for possível pelo sistema de ventilação existente, o uso criterioso de aberturas de
portas e janelas, exaustores ou ventiladores auxiliam no controle.
A proteção respiratória (máscara) com filtro HEPA (high efficiency particulate air) consegue filtrar
99,97% das partículas > 0,3 µm de diâmetro em suspensão. Considerando que as partículas infectantes
tem de 1 a 5 µm, estes protetores devem ser utilizados em ambientes com alta concentração de partículas
(quarto de isolamento, sala de broncoscopia e escarro induzido e em técnicas para pesquisa de BAAR no
laboratório). As máscaras limpas podem ser reutilizadas pelo profissional por longos períodos, desde que
se mantenham íntegras, secas e limpas. As máscaras cirúrgicas comuns não oferecem proteção adequa-
da quando utilizadas pelos profissionais nesta situação, ficando seu uso restrito na contenção das partícu-
las no momento em que são geradas, sendo então indicadas para os pacientes bacilíferos fora dos locais
de isolamento. Desta forma as partículas ficarão retidas antes de serem ressecadas e suspensa no ar,
diminuindo consideravelmente a contaminação do ar ambiente.
Proteção do profissional durante a pesquisa do bacilo

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ORIENTAÇÕES PARA PROFISSIONAIS DE SAÚDE QUE ATUAM EM ÁREA
HOSPITALAR
• Isolamento do paciente com tuberculose confirmada por baciloscopia de escarro ou cultura, bem
como nos casos de suspeita de tuberculose pulmonar bacilífera;
• Os profissionais de saúde devem usar EPIs – protetor respiratório tipos respiradores N95-NIOSH
durante o período em que estiverem em contato com pacientes em isolamento, ou durante ato cirúrgico em
casos de tuberculose confirmada e, também , na realização de autópsias.
• Nos locais considerados de risco elevado para tuberculose como sala de broncoscopia, de escar-
ro induzido e de nebulização de pentamidina, recomenda-se que o recinto fique sob pressão negativa
fazendo com que o ar proveniente deste seja dirigido para o exterior da unidade para locais afastado de
outros pacientes, de profissionais de saúde e de sistema de captação. Quando isso não for possível,
recomenda-se o uso de filtro HEPA (Hight Efficiency Particulate Air Filter) na sala;
• O paciente em isolamento deve ser orientado a cobrir a boca e o nariz ao tossir ou espirrar;
• Sempre que o paciente em isolamento necessite fazer exame e/ou procedimento em outro local,
deve estar usando máscara cirúrgica.
ORIENTAÇÕES PARA PROFISSIONAIS DE SAÚDE QUE ATUAM EM
ATENDIMENTO AMBULATORIAL DE PORTADORES DE TUBERCULOSE
ATIVA (CONFIRMADA OU NÃO)
• O contato deve proceder de forma normal, desde que haja ventilação adequada no local;
• Todo recinto de atendimento de tuberculose não deve contar com ventilador de teto, mas pode
contar com ventiladores direcionais e exaustores posicionados em pontos estratégicos visando diminuir a
concentração e a remoção das partículas infectantes para fora do recinto;
• Em caso de não haver ventilação adequada no local, os profissionais de saúde necessitam EPI
(máscaras especiais - respiradores N95). |Sugere-se que toda unidade de saúde de alto risco de infecção
por tuberculose conte com máscaras de 2 ou 3 tamanhos diferentes, de forma que permita que a mesma se
adapte perfeitamente ao rosto do profissional. As máscaras podem ser reutilizadas pelo mesmo profissio-
nal por longos períodos, desde que se mantenham íntegras, secas e limpas;
• A unidade de atendimento de tisiologia deve contar, sempre que possível, com sala de espera
dirigida e bem ventilada;

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• Todo recinto de atendimento de tuberculose deve ser limpo sem varredura seca, ou seja, o ambi-
ente deve ser varrido com pano úmido para evitar a formação de aerodispersóis;
• Sempre que possível, o fluxo dos portadores ou com suspeita de tuberculose, em nível ambulatorial,
deve ser distinto (exemplo: porta de entrada e sala de espera própria);
• No caso de hospital-dia e em salas de emergência, recomenda-se que sintomáticos respirátorios a
mais de 04 semanas, ao permanecerem no mesmo recinto com outras pessoas, usem máscaras cirúrgicas;
• Recomenda-se que, frente ao grande número de casos de tuberculose em nosso meio, todas as
unidades de emergência contem com um quarto de isolamento;
• Todo o profissional de saúde, ao ingressar para trabalhar no setor de tisiologia, deve ser submeti-
do ao teste tuberculínico. Quando o resultado ao primeiro teste for não reator, o mesmo deve ser repetido
no período máximo de 03 semanas (efeito booster). Quem já era previamente reator ao teste do Mantoux
ou que já tenha tratado tuberculose não necessita repetir o teste. O profissional deve ser orientado do
resultado do teste, que deve ser confidencial. A repetição periódica do teste vai depender do grau de
exposição à tuberculose.
ORIENTAÇÕES PARA PROFISSIONAIS DE SAÚDE QUE ATUAM EM
LABORATÓRIOS
• Treinamento em Segurança no Laboratório: o treinamento é essencial, deixando as pessoas en-
volvidas conscientes dos riscos potenciais, entendendo e utilizando as precauções de segurança e com
conhecimento para agir em caso de acidente.
• Minimização da Ocorrência de Aerossóis: durante a técnica de investigação do bacilo deve-se:
- Usar frascos adequados para o escarro: rígido, para evitar esmagar no transporte, e, com uma boa
vedação para evitar o ressecamento do material.
- Usar bico de Bunsen entre o operador e o espécime: técnica asséptica.
- Não usar chama para secar o esfregaço.
- Não agitar o frasco com escarro antes de abri-lo.

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• Segurança no Laboratório: para manter a segurança no laboratório é necessário mantê-lo arruma-
do e limpo, sendo proibido fumar, comer e beber. Esterilizar todos os materiais contaminados e descartá-
los como resíduos infectantes. Manter ordem das soluções e materiais conforme o uso, manter o microscó-
pio em boas condições. Descontaminar a superfície de trabalho com álcool 70%, manter todas as portas
do laboratório fechadas mantendo um bom sistema de ventilação, a organização dos materiais na mesa de
preparação do esfregaço deve ser sempre a mesma (padronização satisfatória) para assegurar um máxi-
mo de segurança. Lavar as mãos com sabão e água após a preparação do esfregaço e antes de deixar o
laboratório,
• Equipamento de Proteção Individual: inclui luvas e avental, e devem ser retirados ao deixar o
laboratório. É preconizado uma proteção respiratória apropriada (N 95), que deve ser usada por pessoas
que estão potencialmente expostas ao M. tuberculosis, durante as técnicas de investigação do bacilo.
• Saúde Ocupacional: todos os profissionais que são selecionados para trabalhar no laboratório de
micobacteriologia devem fazer o teste de Mantoux, o exame radiológico e serem treinados nas técnicas de
segurança nos procedimentos usualmente empregados, periodicamente.

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A
o desenvolvermos nossas atividades de assistência à saúde de forma direta ou indireta ao
paciente, lidamos com material biológico, isto é, sangue, secreções e excreções corporais.
Estes fluidos contendo ou não sangue, podem estar albergando microrganismos responsá-
veis por doenças graves virais e bacterianas. Por isso utilizamos as Precauções Padrão para nossa prote-
ção no trabalho (Capítulo 2).
Mesmo assim os riscos de acidentes sempre estão presentes, pois há situações em que fatores
gerais como stress, sobrecarga de trabalho, agitação psicomotora do paciente e a transgressão das nor-
mas de prevenção podem ter sua participação na ocorrência de acidentes com exposição à materiais
biológicos. Doenças virais como a AIDS e a Hepatite B podem ser inibidas na sua transmissão através de
ações profiláticas com a vacina e imunoglobulina, no caso da Hepatite B, e antiretrovirais, com diferentes
composições e indicações, no caso da AIDS.
Na rede de assistência à saúde da Secretaria Municipal de Saúde existe uma Rotina de Atendimen-
to ao Trabalhador da Saúde que se expôs à material biológico. Esta rotina é apresentada em todas as
unidades básicas através de uma pasta kit contendo todos os formulários para encaminhamento pela
Unidade de Saúde aos Serviços de Referência (HPS, PACS e CS Bom Jesus) para avaliação do risco do
acidente, indicação de profilaxia para HIV e Hepatite B e coleta de marcadores sorológicos para HIV,
Hepatite B e Hepatite C. Este Kit deve ser de conhecimento de todos e deve ser conferido pela chefia da
U.S. ou responsável pelo encaminhamento. A seguir descreveremos as providências a serem seguidas:
C
C
C
C
CAPÍTULO 8
APÍTULO 8
APÍTULO 8
APÍTULO 8
APÍTULO 8
A
A
A
A
ACIDENTE COM S
CIDENTE COM S
CIDENTE COM S
CIDENTE COM S
CIDENTE COM SANGUE E/OU SECREÇÕES –
ANGUE E/OU SECREÇÕES –
A
A
A
A
ATENDIMENTO DO PROFIS
TENDIMENTO DO PROFIS
TENDIMENTO DO PROFISSIONAL EXPOSTO
SIONAL EXPOSTO
SIONAL EXPOSTO
SIONAL EXPOSTO
SIONAL EXPOSTO
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FLUXO PARA EXPOSIÇÃO OCUPACIONAL A MATERIAL BIOLÓGICO
NAS UNIDADES DE SAÚDE
Entende-se por exposição ocupacional as situações envolvendo sangue ou secreções corporais em
lesões percutâneas (como ferimentos pérfuro-cortantes determinados por agulhas, por exemplo), contato
com membrana mucosa ou pele não-íntegra (quando há alguma lesão de pele, dermatite ou ferida) ou
contato com pele íntegra quando a duração do mesmo é prolongada (vários minutos ou horas). Secreções
corporais incluem: sêmen, secreções vaginais, líquido cerebroespinhal, sinovial, pleural, peritoneal,
pericárdico, amniótico. Exposição a saliva, lágrimas,vômito, urina e fezes sem a presença de sangue não
requer acompanhamento pós-exposicão.
Se confirmada a exposição ao material biológico, o que fazer?
ACIDENTADO: SERVIDOR, ESTAGIÁRIO, INTERNO, RESIDENTE,
EMPREGADO TERCEIRIZADO
1. Lava abundantemente o ferimento ou mucosa, estimulando o sangramento.
2. Identifica paciente fonte (nome, US ).
3. Busca orientação da chefia imediata.
4. Solicita Notificação de Acidente do Trabalho (as duas vias) para a chefia.
5. Vai ao setor de referência conforme a localização da unidade (HPS / Bom Jesus / PACS )
levando amostra de sangue do paciente-fonte rotulada, folha de consentimento do paciente-
fonte e NAT.
6. Na referência, faz o boletim de atendimento, dirigi-se à consulta médica (avaliação do risco
para quimioprofilaxia do HIV e hepatite B), faz a coleta de sangue e retira os anti-retrovirais,
se for o caso.
7. Vai ao NAST entre 48h a 5 dias levando consigo a NAT, o termo de consentimento do
paciente-fonte, o termo de consentimento do acidentado e a 2ª via do boletim de atendimento.
8. Faz acompanhamento sorológico em 3 e 6 meses no NAST/SMS se o paciente tiver sorologia
positiva.

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CHEFIA IMEDIATA OU REPRESENTANTE
1. Providencia consentimento por escrito do paciente fonte para coleta de amostra de san-
gue. Caso o paciente não tenha condições clínicas para o consentimento, fazer a coleta
identificando com o número do prontuário.
2. Providencia a coleta de amostra de sangue do paciente-fonte (5ml de sangue em tubo seco
com tampa, guardar sob refrigeração de 2 a 8 graus se não encaminhar no momento).
3. Após a coleta da amostra de sangue, entregar para o paciente-fonte o endereço para
retirada dos resultados (no NAST/SMS).
4. Orienta sobre a rotina e encaminha o acidentado para referência conforme localização da
unidade (veja regionalização). Caso o acidentado negue-se a seguir a rotina, solicita ao aci-
dentado que assine o termo de recusa e encaminha o termo de recusa do acidentado e a NAT
ao NAST/SMS.
5. Emite NAT (em duas vias) e entrega ao funcionário.
OBS: a coleta do paciente-fonte só será realizada se o acidentado concordar em seguir a
rotina pós-exposição.
COLETA DA AMOSTRA DE SANGUE DO PACIENTE-FONTE
Após o consentimento verbal
- lava as mãos;
- calça luvas;
- garroteia o braço;
- aplica antisséptico no local da punção;
- punciona a veia;
- aspira 5 ml de sangue;
- retira o garrote;
- retira a agulha da veia comprimindo o local com algodão;
- introduz a agulha na tampa vermelha do tubo;

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70
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- ejeta lentamente o sangue para dentro do tubo de ensaio;
- rotula com etiqueta própria o nome do paciente-fonte, data e local acidente do trabalho;
- transporta numa caixa até a unidade de referência, caso não seja possível o transporte imediato da
amostra, conservá-la sob refrigeração (2 a 8°). A reposição dos tubos de ensaio será feito pela Unidade de
Referência quando solicitado pela Unidade Básica.

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C
C
C
C
CAPÍTULO 9
APÍTULO 9
APÍTULO 9
APÍTULO 9
APÍTULO 9
COLETA SELETIVA DOS RESÍDUOS
SÓLIDOS DE SAÚDE
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O
gerenciamento de resíduos deve ser implantado como rotina nas UBS e devem ser ofereci
das as condições necessárias para seleção dos resíduos, recolhimento para um local de
armazenamento até a coleta pelo DMLU. Deve haver uma Comissão de Gerenciamento de
Resíduos que deverá incluir em sua rotina um programa de treinamento para os profissionais geradores
de resíduos e para os responsáveis pela limpeza e dispensação final dos resíduos.
Cada sala de uma Unidade de Saúde, dependendo do tipo de atividade desenvolvida deverá ter
locais determinados para a localização das lixeiras de Coleta Seletiva. A Coleta Seletiva compreende a
separação, já no momento do descarte, dos diferentes tipos de resíduos. Nas Unidades de Saúde, gera-se
resíduos Comuns, Recicláveis, Infectantes e Químicos. Recomenda-se que, nas salas, cada lixeira conte-
nha a identificação do tipo de resíduo e acima, com adesivo, seja fixada uma lista de resíduos que deverão
ser desprezados em tais lixeiras. Indica-se o uso de cores para identificar os recipientes e programação
visual padronizando símbolos e descrições utilizadas.
Resíduos Comuns
São resíduos nos estados sólidos ou semi-sólidos, semelhantes aos resíduos domiciliares que re-
sultam de atividades diversas de alimentação, fisiológicas, de limpeza, não oferecendo nenhum risco à
sua manipulação ou à Saúde Pública. Compondo os resíduos comuns, temos os resíduos recicláveis que
serão descartados e recolhidos separadamente.
Relação dos Resíduos:
Cascas de frutas, restos de lanches, erva-mate, papel higiênico, absorventes higiênicos, papel toa-
lha, papel carbono, esponjas, esponja de aço, folhas e flores, restos de madeira, isopor, etc.

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Como acondicionar dentro da sala:
Lixeira com tampa e pedal identificada como Lixo Comum, com saco preto e uma relação dos resí-
duos a serem descartados ali. Os sacos destas lixeiras menores deverão ter seu recolhimento ao final de
cada turno ou com 2/3 de sua capacidade preenchida, e serem colocados dentro de um saco preto maior.
Onde armazenar até a coleta final do DMLU:
Colocar os sacos grandes contendo os resíduos recolhidos de cada sala dentro de um container.
Centralizar os diferentes conteiners com tampa e identificação, (lixo comum, lixo reciclável, lixo infectante),
em uma área protegida de chuva, de acesso restrito somente a profissionais da limpeza e DMLU. Se
depositados em via pública, colocar próximo ao horário da coleta do DMLU.
Resíduos Recicláveis
São resíduos sólidos que, após o uso, podem ter sua matéria prima reaproveitada, gerando econo-
mia de recursos naturais e financeiros, além gerar novos empregos através das usinas de reciclagem. São
resíduos de plástico, vidro, papel, papelão e metal sem sujidade biológica visível.
Frascos de soro, papeis de embrulho, caixas ou tubos plásticos de medicamentos, rolos vazios de
esparadrapo, caixas de papelão, vidros, frascos-ampola vazios, copos descartáveis, tubos de alvejantes e
detergentes, sacos plásticos, embalagens de água, refrigerantes, embalagens de alumínio, latas em geral
etc. Os vidros grandes, frágeis ou quebrados devem ser protegidos em caixa de papelão antes do descarte
no saco plástico.
Lixeira com tampa e pedal identificada como Lixo Reciclável, com saco verde e uma relação dos
resíduos a serem descartados ali. Estes sacos de lixo deverão ter seu recolhimento ao final de cada turno
ou com 2/3 de sua capacidade preenchida, e serem colocados dentro de um saco verde maior.
Colocar os sacos grandes com os resíduos recolhidos dos diversos locais dentro de um container.
Centralizar os diferentes conteiners com tampa e identificação, em uma área protegida de chuva, de aces-
so restrito somente a profissionais da limpeza e DMLU. Se depositados em via pública, colocar próximo ao
horário da coleta seletiva do DMLU.

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Resíduos Infectantes
São resíduos que resultam das atividades de assistência, laboratório ou atos cirúrgicos, que promo-
vam liberação de material biológico, oferecendo risco à Saúde Pública ou à manipulação. Dentro deste
grupo inclue-se os pérfuro-cortantes que devem ter o descarte em recipiente apropriado antes de serem
agregado ao restante dos resíduos infectantes.
Gaze, esparadrapo, sondas, drenos, cateteres, luvas usadas, máscaras usadas, gorros usados,
bolsas coletoras de drenagens, papel de embrulho contaminado, campos protetores de superfícies, etc.
Lixeira com tampa e pedal identificada como Lixo Infectante, com saco branco e uma relação dos
resíduos a serem descartados ali. Estas lixeiras deverão ter seu recolhimento ao final de cada turno ou
com 2/3 de sua capacidade preenchida, e serem colocados dentro de um saco branco leitoso com espes-
sura mínima de 10 micrometros contendo o símbolo internacional de risco biológico estampado no saco de
100 litros. Em salas de assistência odontológica recomenda-se o uso de porta resíduos com capacidade
aproximada de um litro, sob a mesa clínica para descarte, após o uso em cada paciente. Estes resíduos
são infectantes também e serão descartados fechados em sacos maiores até o recolhimento final. As
peças anatômicas e bolsas de sangue devem ser descartadas, em saco branco leitoso duplo dentro do
recipiente para resíduos infectantes.
Relação dos Resíduos Pérfuro-Cortantes:
Seringas agulhadas, fios agulhados, fois de aço, lâminas de bisturi, lâmina de barbear, ampolas de
medicação, scalp, agulha de Abocath, agulhas de sutura, agulhas para Carpule, etc.
Descartar em caixa apropriada (rígida e impermeável), lacrar quando atingir 2/3 da capacidade
indicada na caixa, descartar dentro do saco branco do lixo infectante até o recolhimento.
Colocar os sacos grandes contendo os resíduos recolhidos de cada sala dentro de um container.
Centralizar os diferentes conteiners com tampa e identificação, (lixo comum, lixo reciclável, lixo infectante),
em uma área protegida de chuva, de acesso restrito somente a profissionais da limpeza e DMLU. Se
depositados em via pública, colocar próximo ao horário da coleta do DMLU.

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Resíduos Farmacêuticos e Químicos
São resíduos tóxicos compostos por medicamentos vencidos, resíduos corrosivos, inflamáveis, ex-
plosivos, reativos, genotóxicos ou mutagênicos.
Medicamentos vencidos, reatores sorológicos vencidos, quimioterápicos e antineoplásicos, germicidas
fora da validade, solventes, mercúrio líquido, soluções para revelação e fixação de radiografias.
Quando vencidos ou contaminados, estes resíduos deverão ser encaminhados ao fabricante ou
empresa técnicamente competente para tratamento que elimine a periculosidade do resíduo para a saúde
pública ou para o meio ambiente, conforme consta na na Resolução CONAMA n° 283/2001.
TRANSPORTE EXTERNO DOS RESÍDUOS SÓLIDOS
O recolhimento de resíduos comuns e recicláveis tem seu cronograma regular por bairros no muni-
cípio de Porto Alegre. Para a coleta especial dos resíduos infectantes, cada Serviço de Saúde deverá
proceder seu cadastramento junto ao Serviço de Coleta Especial do DMLU - Departamento Municipal de
Limpeza Urbana observando a periodicidade, dia da semana e horário, para elaboração da rotina do
recolhimento final.
Hamper com lixo infectante, reciclável e caixa de pérfuro-cortantes

75
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desratización. In: Infección hospitalária. Universidad de Granada, Granada, 1993.
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REFERÊNCIA
REFERÊNCIA
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S
S
S
S
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76
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